Especies de arañas como agentes de control biológico natural de la “cigarrita marrón” (Tagosodes orizicolus Muir) en el cultivo de arroz en el valle de Tumbes

 

Spider species as natural biological control agents of the “brown planthopper” (Tagosodes orizicolus Muir) in rice cultivation in the Tumbes valley

Pedro S. Castillo-Carrillo1; Pedro G. Calle-Ulfe1; Jean C. Silva-Alvarez2, *

 

1 Facultad de Ciencias Agrarias, Universidad Nacional de Tumbes. Ciudad Universitaria, Av. Universitaria S/N, Tumbes. Perú.

2 Inca'Biotec S.A.C., Tumbes, 24000. Perú.

*Autor corresponsal:  jcsa.jean@gmail.com (J. C. Silva-Alvarez).

 

ID ORCID de los autores

 

P.S. Castillo-Carrillo: https://orcid.org/0000-0002-0255-1047

J.C. Silva-Alvarez: https://orcid.org/0000-0002-7026-4955

 

 

RESUMEN

 

Las arañas son parte de la fauna benéfica presente en los agroecosistemas de arroz en Tumbes y cumplen un rol fundamental como agentes de biocontrol de Tagosodes orizicolus Muir. Se hace necesario conocer su biodiversidad para integrarlas en el manejo integrado de plagas. El objetivo del estudio fue identificar las especies y sus fluctuaciones poblacionales en el cultivo de arroz en el valle de Tumbes. El primer periodo de evaluación fue durante octubre 2018 a enero 2019 en cultivos sembrados bajo la modalidad de trasplante y de abril a junio de 2019 de siembra directa. Las colectas fueron semanales, las técnicas de colecta fueron trampas de caída, observación directa en un determinado número de plantas por m2 y barrido con red entomológica. El material colectado fue llevado a los ambientes del museo entomológico para su procesamiento, identificación y conservación. Se recolectaron ejemplares pertenecientes a 18 familias, las más representativas fueron Lycosidae (65,05%), Tetragnathidae (15,15%) y Oxyopidae (6,48%). Se identificaron 37 especies y/o morfoespecies. Las más abundantes fueron Hogna albemarlensis (45,57%), Arctosa minuta (12,46%) y Tetragnatha nitens (10,63%). Este estudio representa la primera contribución al conocimiento de la diversidad de arañas presentes en el cultivo de arroz en el valle de Tumbes.

 

Palabras clave: Agroecosistema; arroz, gremios; Aranae

 

ABSTRACT

 

Spiders are part of the beneficial fauna present in the rice agroecosystem in Tumbes and play a fundamental role as biocontrol agents of Tagosodes orizicolus Muir. It is necessary to know their biodiversity to integrate them into integrated pest management. The objective of the study was to identify the species and their population fluctuations in rice cultivation in the Tumbes valley. The first evaluation period was during October 2018 to January 2019 in crops sown under the transplant modality and from April to June 2019 of direct sowing. The collections were weekly, the collection techniques were fall traps, direct observation in a certain number of plants per m2 and sweeping with an entomological net. The collected material was taken to the entomological museum environments for processing, identification and conservation. Specimens belonging to 18 families were collected, the most representative were Lycosidae (65.05%), Tetragnathidae (15.15%) and Oxyopidae (6.48%). 37 species and / or morphospecies were identified. The most abundant were Hogna albemarlensis (45.57%), Arctosa minuta (12.46%) and Tetragnatha nitens (10.63%). This study represents the first contribution to the knowledge of the diversity of spiders present in rice cultivation in the Tumbes valley.

 

Keywords: Agroecosystem; rice; guild; Aranae.

 

 

Recibido: 19-03-2021.

Aceptado: 24-05-2021.


 

 

 

INTRODUCCIÓN

 


El arroz es uno de los cultivos de cereales más importantes de la humanidad, se estima que aproximadamente 11% de la tierra cultivable en todo el mundo es utilizada para la producción de arroz y los granos proporcionan el 20% de las calorías para más de la mitad de la población mundial (Van Groenigen et al., 2013; Gutaker et al.,

2020). A nivel nacional el arroz en cáscara es el producto que más aporta al valor bruto de la producción (VBP) de la actividad agrícola. Su valor de producción, a precios constantes de 2007 representa el 13,1% del VBP del año 2018. Las intenciones de siembra para la campaña 2019-2020 se proyectan en 413 281 hectáreas (Ministerio de Agricultura y Riego, 2020). Igualmente en el valle de Tumbes este cultivo es uno de los más importantes, así durante el año 2017-2018 y 2018-2019, la superficie cosechada fue de 16636 y 15752 hectáreas (Ministerio de Agricultura y Riego, 2019).

Actualmente, este cultivo enfrenta diversidad de problemas fitosanitarios, algunos provocados por efecto del cambio climático y otros por el manejo inadecuado de plaguicidas que realiza el agricultor afectando a los enemigos naturales que permiten la regulación natural de las poblaciones de insectos plagas, como son arañas e insectos entomófagos, provocando un incremento explosivo de los insectos plagas, la aparición de nuevas plagas y la adquisición de resistencia a los plaguicidas aplicados dificultando de esta manera su control. Uno de los insectos que en los últimos años ha adquirido importancia económica, es la “cigarrita marrón” o “sogata” Tagosodes orizicolus Muir, que además de ocasionar daños directos al alimentarse de la savia de la planta y ovipositar en ella, es vector del “virus de la hoja blanca del arroz” provocando mermas en la producción de hasta el 100%. (Martin et al., 2019; Liu et al., 2018, Morales y Jennings, 2010, Backus et al., 2005).

Las arañas son agentes eficaces de control biológico en el ecosistema de arroz (Vivas-Carmona & Astudillo-García, 2017; Vinothkumar, 2012) y su población es fluctuante en las diferentes etapas del cultivo y de acuerdo al nivel poblacional de los insectos plagas. En estudios realizados en la India encontraron que Lycosa pseudoannulata, Tetragnatha javana y Oxyopes javanus fueron observadas durante todo el período de estudio. L. pseudoannulata presentó las poblaciones más altas en la etapa vegetativa y T. javana predominantemente durante las últimas etapas de la cosecha, y se precisa que la aparición de arañas en diferentes días después del trasplante garantiza la protección del cultivo contra los insectos fitófagos (Vinothkumar, 2012). Igualmente, Butt & Tahir (2010) en un área de monocultivo de un ecosistema de arroz en Punjab, Pakistán, al investigar los factores responsables de la coexistencia de tres especies de arañas cazadoras (Lycosa terrestris, Pardosa birmanica y O. javanus) y dos especies de arañas tejedoras de red orbitales (T. javana y Neoscona theisi), encontraron que los miembros de ambos gremios se alimentaron de presas de los mismos órdenes, pero en diferentes proporciones, los autores concluyen en que la separación de los miembros del gremio en tiempo, micro hábitat y las dimensiones del nicho de la presa redujo la competencia.

En Colombia, en cultivos de arroz en el valle del Cauca, se han registrado 11 familias de arañas, representadas en 29 especies, siendo las más importantes por frecuencia y abundancia Tetraganatha sp., T. straminea (Tetragnathidae), Phidippus clarus (Salticidae), Synaemops rubropunctatum (Thomisidae), Oxyopes salticus (Oxypidae), Argiope argentata (Araneidae) y Pardosa sp., cerca de saxatilis (Lycosidae), (Bastidas et al., 1994). En cambio, en el norte del Departamento de Santander, se han registrado 21 especies de las cuales se han identificado 12, pertenecientes a siete familias y las tres especies de arañas más abundantes son: Alpaida veniliae (Araneidae), Oxyopes salticus (Oxyopidae) y Tetragnatha sp. (Tetragnathidae), (Cuevas, 1994).

El control biológico que ocurre naturalmente en los diferentes agroecosistemas se evidencia cuando el ambiente no es afectado por prácticas culturales erróneas, principalmente con el uso indiscriminado de productos químicos, que afectan tanto a las plagas, como a los enemigos naturales disponibles en el medio ambiente (Huffaker & Messenger, 1976).

De lo anteriormente descrito, se desprende la importancia del control biológico natural y de que el conocimiento sobre las especies de arañas presentes en el cultivo de arroz en Tumbes es inexistente. Por tal razón, se planteó esta investigación que tuvo por objetivo determinar e identificar el número de especies de arañas que actúan como agentes de control biológico natural de la “cigarrita marrón” (T. orizicolus), así como evaluar sus fluctuaciones poblacionales en el cultivo de arroz en el valle de Tumbes.


 

MATERIAL Y MÉTODOS

 


Área de estudio

El proyecto de Investigación se ejecutó en la Facultad de Ciencias Agrarias de la Universidad Nacional de Tumbes, (Sur 3°35´18,95” y Oeste: 80°30´16,54´´) en un campo con una extensión de una hectárea de cultivo de arroz. El primer periodo de evaluación se realizó durante octubre 2018 a enero 2019 bajo la modalidad de siembra a trasplante y el segundo de abril a junio de 2019 bajo la modalidad de siembra directa.

Fase de campo

Técnicas de muestreo. Se aplicaron tres técnicas: empleo de red entomológica, búsqueda directa por m2 y trampas de caída.

Técnica empleando red entomológica. Para la captura de especies de arañas, el campo se dividió en cinco puntos y en cada uno de ellos se realizaban cinco redadas dobles utilizando la red entomológica. Los ejemplares de los artrópodos capturados fueron depositados en bolsas plásticas transparentes y llevadas al laboratorio para su separación previa en morfotipos y posteriormente clasificados e identificados por géneros y especies. Los muestreos se realizaron semanalmente durante los dos periodos de evaluación. Cabe indicar que durante la primera instalación del cultivo se optó por realizar 20 redadas dobles por parcela, pero cuando el cultivo ingresó a la fase de floración y espigado este número se redujo a 10. Para el segundo periodo de evaluación se consideró realizar solo 10 redadas dobles para tratar de evitar la disminución en la población de arañas.

Técnica de búsqueda directa. Se elegía un m2 al azar por punto de evaluación y se revisaban las plantas dentro de esa área para recolectar las arañas presentes. En el primer periodo de evaluación (octubre 2018 - enero 2019), como el área experimental fue sembrada en subparcelas en fechas distintas, se optó por evaluar 1 m2 en cada subparcela.  Para el segundo periodo de evaluación, como toda el área de 1 ha había sido sembrada bajo el sistema de siembra directa en una sola fecha de siembra se optó por evaluar 5 m2. En este caso se tomaron 5 puntos al azar, evaluándose 1 m2 por punto de evaluación. En ambos casos se contó el número de arañas presentes, en las plantas o entre los macollos, para lo cual se hizo uso de un marco de 1 m2 de área confeccionado con tubos de PVC.

Técnica de trampas de caída. Se instalaron 10 trampas de caída o pitfall sobre los bordos que circundaban el área donde se había sembrado el arroz. Las trampas consistían en depósitos plásticos de boca ancha (12 cm de diámetro × 10 cm de profundidad de 1 L. de capacidad). Cada trampa contenía 25 cm3 de formol, 225 cm3 de agua, a la cual se le añadieron 2 gotas de jabón líquido para romper la tensión superficial.

Fase de laboratorio

El material recolectado en campo fue llevado al Museo Entomológico de la Facultad de Ciencias Agrarias de la Universidad Nacional de Tumbes ubicado en el mismo campus, para su montaje, etiquetado, identificación y posterior preservación. 

Identificación de las especies

Con la ayuda de un microscopio estereoscopio, los ejemplares fueron diferenciados en morfotipos y luego se realizó la identificación a nivel de familias usando las claves de Jocqué & Dippenaar- Shoeman (2006), Aguilera & Casanueva (2005), Levi (2002), Tikader & Malhotra (1980), Kaston (1970), World Spider Catalog (2019 y 2020) y otra literatura relacionada. Para corroborar la identificación realizada a nivel de familias y realizar la identificación de los morfotipos a nivel de especie, el material procesado fue enviado a los especialistas en arañas Diana Silva y Juan Andia.

Asignación de gremios

Identificadas las especies de arañas por los especialistas indicados, las familias registradas se agruparon en gremios para lo cual se tuvo en cuenta la clasificación de Uetz et al. (1999), la misma que constituye una clasificación específica desarrollada por los autores citados para agroecosistemas, y que agrupan a las familias de arañas encontradas en diversos tipos de cultivos en ocho gremios: corredoras de follaje, corredoras terrestres, emboscadoras, acosadoras, tejedoras de hojas, tejedoras en sábana, tejedoras espaciales y tejedoras orbiculares.

Análisis de datos

Para el análisis de los datos se tuvieron en cuenta los estados adultos de cada especie por familias, teniéndose en cuenta la suma de las arañas recolectadas de todas las evaluaciones en los dos periodos de evaluación y el total de las tres técnicas o modalidades de colecta. Con la finalidad de realizar un comparativo de los dos periodos de evaluación sembrados bajo dos modalidades diferentes de siembra, se tomaron en el caso del primer periodo los datos de solo tres meses (se excluyó el mes de enero debido a que solo se habían realizado dos evaluaciones y en la cual el arroz estaba completamente seco) y comparar con la otra modalidad de siembra y así poder aplicar los índices de diversidad de arañas de Shannon -Wiener (H1), que responde a la gran cantidad de cambios que se producen en especies raras en la comunidad y el índice de Simpson (λ), que es un índice sensible a los cambios que se producen en las especies más abundantes en una comunidad. Los estimadores Chao 1, Jacknife de 1° orden y las Curvas de acumulación de especies se evaluaron para todo el periodo que duró el estudio y se hizo uso del programa EstimateS 9.1.0 para Windows.  Para la riqueza específica, los índices de dominancia de Simpson y de diversidad de Shannon-Wiener se evaluaron por modalidades o técnicas de siembra y se utilizó el programa Past 2.17c. La fluctuación poblacional de arañas se realizó teniendo en cuenta los dos periodos de evaluación y las tres técnicas de muestreo empleadas. Además, se evaluó la correlación lineal entre la abundancia de arañas con la temperatura y humedad relativa con el programa Excel.

 

 

RESULTADOS Y DISCUSIÓN

 


Abundancia de arañas

Se recolectaron un total de 4266 individuos durante los nueve meses de estudio, la mayoría 2629 ejemplares, aprox. 61,6% corresponde a estadios juveniles, de los cuales, aproximadamente, un 80% corresponden a la familia Lycosidae. Esto constituye una densidad poblacional de 0,4 arañas por m2 y la diferencia 1637 (38,4%) corresponden a los adultos, en este caso las familias más abundantes fueron Lycosidae (65,05%), Tetragnathidae (15,15%) y Oxyopidae (6,48%), (Tabla 1). Las especies más abundantes fueron Hogna albemarlensis (45,57%) (Figura 1)., Arctosa minuta (12,46%) (Figura 2) y Tetragnatha nitens (10,63%) (Figura 3).

Para propósitos de identificación taxonómica, los estadios juveniles no fueron considerados porque no es posible identificarlos con certeza ni siquiera a nivel de familia (Comunicación personal de los especialistas que brindaron su apoyo en la identificación de las especies).

 

Figura 1Hogna albemarlensis (Foto. Juan Andia)

 

Figura 2Arctosa minuta (Foto: Juan Andia)

 

La correlación lineal entre la abundancia de arañas al estado adulto y la temperatura resultó ser no significativa (r = 0,236) e igualmente para la humedad relativa (r = -0,2386), esto indica que estos factores climáticos no tienen un marcado efecto sobre la población de arañas.

 

Riqueza de arañas. El examen de los ejemplares adultos (37%) resultó en un total de 37 especies y/o morfoespecies (Tabla 1) y mostró la dominancia de Hogna albemarlensis (Banks, 1902) sobre el resto de las especies (Figura 4). Las familias más ricas en especies fueron Lycosidae y Theridiidae con cinco especies cada una, seguidas de Tetragnathidae y Salticidae con cuatro. Los resultados indican que hay varios nuevos registros para Perú y se ha observado la ocurrencia de varias especies que sólo han sido reportadas para las islas Galápagos (Ecuador). 

 

Figura 3Tetragnatha nitens: (a) hembra adulta y (b) Quelíceros de hembra adulta (Fotos: Juan Andia).

 

Diversidad de arañas. Los estimadores de diversidad Chao 1 y Jack 1 presentan un valor de 40 y 30 especies cada uno, e indican que tienen el 85 y 89% de las especies estimadas correspondien-temente. La curva de acumulación de especies (Figura 4) no alcanzó la asíntota para el estimador Jack 1 observándose aún en crecimiento, no así para el estimador Chao 1 que comienza a decrecer. Esto indica según el estimado de Jack 1 que el agroecosistema del cultivo de arroz tiene una mayor riqueza esperada de arañas que la registrada. 


 

Figura 4. Curva de acumulación de especies de arañas en el cultivo de arroz. Corrales, Tumbes, Perú.

Tabla 1

Lista de familias, especies y morfoespecies de arañas registradas en el cultivo de arroz. (* = recolectada por búsqueda directa en m2, **= recolectada por redada doble y ***= recolectada por trampa de caída)

 

Gremios

Familias

Especies y/o morfoespecies

Técnica de colecta

Individuos totales por técnica de colecta

Corredoras de follaje

Anyphaenidae

Anyphaenoides pacifica (Banks,1902)

***

(1)

Corredoras terrestres

Gnaphosidae

Zelotes laetus (O. Pickard-Cambridge,1872)

***

(77)

Camillina piura Platnick & Shadab, 1982

***

(3)

Lycosidae

Hogna albemarlensis (Banks, 1902)

***

(746)

Arctosa minuta F.O. Pickard - Cambridge, 1902

***,*

(197),(7)

Hogna hendrickxi Baert & Maelfait, 2008

***

(55)

Hogna subaustralis (Strand, 1908)

***

(36)

Hogna espanola Baert & Maelfait, 2008

***

(24)

Miturgidae

Teminius hirsutus (Petrunkevitch, 1925)

***,*

(2),(4)

Oonopidae

Ischnothyreus peltifer (Simon, 1892)

***

(1)

Pisauridae

Pisauridae sp.

***

(1)

Scytodidae

Scytodes sp.

***

(1)

Trachelidae

Trachelas daubei (Schmidt, 1971)

***

(2)

Acosadoras

Oxyopidae

Oxyopes salticus Hentz, 1845

***, **,*

(70),(23),(7)

Oxyopes incantatus (Santos, 2017)

**,*

(1),(5)

Salticidae

Salticidae sp. 1

***, **

(3),(7)

Salticidae sp. 2

***,**

(2),(2)

Salticidae sp. 3

**

(1)

Salticidae sp. 4

**

(1)

Emboscadoras

Thomisidae

Misumenops sp.

**,*

(1),(6)

Tejedoras orbiculares

Araneidae

Alpaida leucogramma (White, 1841)

***,**,*

(3),(3),(6)

Parawixia kochi (Taczanowski, 1873)

**

(2)

Tetragnathidae

Tetragnatha nitens (Audouin, 1826)

**,*

(144),(30 )

Tetragnatha elongata Walckenaer, 1841

**,*

(54),(10 )

Glenognatha argyrostilba (O.Pickard-Cambridge, 1876)

***,**

(1)(8)

Leucage sp.

**

(1)

Tejedoras en sabana

Linyphiidae

Mermessus denticulatus (Banks, 1898)

**,*

(4),(4)

Labicymbium sp.

***,**,*

(1),(1), (3)

Mermessus sp.

***,**

(3),(2 )

Tejedoras espaciales

Dictynidae

Phantyna mandibularis (Taczanowski, 1874)

***,**,*

(4),(2),(3)

Mysmenidae

Mysmenus sp.

**

(1)

Theridiidae

Theridion volubile Keyserling, 1884

***,**,*

(6),(9),(7)

Theridion coldeniae (Baert & Maelfait, 1986)

***,**,*

(1),(2),(9)

Theridion sp. 2

**,*

(5),(7)

Theridion melanostictum Pickard-Cambridge, 1876

**,*

(3),(4)

Theridion sp. 3

*

(4)

Titanoecidae

Goeldia patellaris (Simon, 1893)

***

(4)

 


Gremios de arañas. Se registraron siete gremios de arañas de acuerdo a la clasificación de Uetz et al. (1999) (Tabla 1). El gremio más abundante fue el de corredoras terrestres (70,62%) (Tabla 2) y también el gremio con mayor riqueza (siete familias y 12 especies (Tabla 1), siendo la familia Lycosidae la más abundante (92,13%), en el de tejedoras orbiculares la familia Tetragnathidae (94,66%), en el de acosadoras la familia más abundante fue Oxyopidae (86,90%), en el caso del gremio de tejedoras espaciales la familia más abundante fue Theridiidae (85,92%), en los gremios de las tejedoras espaciales, tejedoras en sabana, emboscadoras y corredoras de follaje solamente se presentó una familia.

 

Tabla 2

Distribución porcentual de individuos por gremios de arañas registradas en el cultivo de arroz

 

Gremios de arañas

Porcentaje

Corredoras terrestres

70,62

Tejedoras orbiculares

16,00

Acosadoras

7,45

Tejedoras espaciales

4,34

Tejedoras en sabana

1,10

Emboscadoras

0,43

Corredoras de follaje

0,06

Fluctuación poblacional de las arañas al estado adulto recolectadas por mes mediante las tres técnicas de colecta, en relación con la temperatura

El mes con mayor presencia de arañas al estado adulto fue diciembre (Tabla 3) donde el cultivo se había ya establecido y existía una mayor cobertura vegetal. El mes con el menor número de individuos recolectados fue febrero, mes cuando ya no existía cultivo de arroz, solo la vegetación circundante.

 

Tabla 3

Número total de individuos adultos de arañas recolecta-das mediante las tres técnicas de colecta por familia registradas en el cultivo de arroz en relación con la temperatura (°C) y la humedad relativa (%)

 

Mes

Individuos

T °C

H.R.%

Octubre

134

26,8

64

Noviembre

194

29,4

67

Diciembre

323

30,7

65

Enero

174

29,6

66

Febrero (*)

130

31,2

70

Marzo (*)

182

31,0

71

Abril

153

30,8

69

Mayo

156

30,2

69

Junio

191

29,1

68

Total

1637

 

 

(*) = ausencia de cultivo.

Fluctuación poblacional de arañas (adultos + ninfas) promedio por m2

 

En la Tabla 4 y Figura 5 se presenta la población de arañas por mes en relación con la temperatura y humedad relativa. Se aprecia que en ambos periodos de evaluación hay un incremento gradual de las poblaciones hasta la etapa fenológica de floración maduración, luego se produce un descenso como consecuencia del secado de la planta y su posterior cosecha.

 

 

 

 

Tabla 4

Total de arañas por m2 y por mes en relación con la temperatura (°C) y la humedad relativa (%)

 

Mes

Individuos

T °C

H.R.%

Octubre

6

26,8

65

Noviembre

21

29,4

67

Diciembre

25

30,8

66

Enero

9

29,5

72

Febrero (*)

0

31,2

70

Marzo (*)

0

31,1

71

Abril

9

25,3

67

Mayo

25

28,3

66

Junio

21

30,3

64

Total

116

(*) = ausencia de cultivo.

 


 

Figura 5. Fluctuación poblacional de arañas adultas por mes y por m2.

(*) = ausencia de cultivo durante febrero y marzo.

 


Fluctuación poblacional de arañas recolectadas con trampa de caída

La familia que presenta un mayor número de especies es Lycosidae y las especies más abundante fueron H. albemarlensis y Arctosa minuta (Tabla 5). La segunda familia en importancia es Gnaphosidae con la especie Zelotes laetus y la tercera es Oxyopidae con la especie Oxyopes salticus.

 

Fluctuación poblacional de arañas recolectadas con red entomológica

En la Tabla 6 se observa que las familias que presentan un mayor número de especies son Tetragnathidae, Theridiidae y Salticidae, siendo las especies más abundante Tetragnatha nitens y Tetragnatha elongata.  En la primera siembra hay una población inicial alta, probablemente por la colonización inicial del cultivo y luego en ambos periodos de siembra se aprecia un incremento poblacional de las especies citadas durante el tercer mes de instalado el cultivo donde existe una cobertura vegetal mayor y un mayor número de presas al ingresar la planta a la fase de floración- maduración.

En la Tabla 7 se aprecia que, mediante la observa-ción directa en las plantas contenidas en un m2, las familias que presentan un mayor número de ejemplares por especie son Tetragnathidae, Theridiidae y Oxyopidae, siendo las especies más abundantes T. nitens y T. elongata.  Tanto en el primer periodo de evaluación como el segundo se inicia una colonización desde las primeras etapas fenológicas del cultivo hasta el tercer mes de instalado coincidiendo con la fase de floración- maduración, luego se produce un descenso.

 

Análisis de la fluctuación poblacional de arañas al estado adulto por sistema de siembra

Con la finalidad de emplear la información obtenida durante la ejecución del proyecto de investigación, y debido a causas presupuestales la segunda instalación de cultivo se realizó con la finalidad de ampliar el periodo de evaluación y tuvo que hacerse bajo la modalidad de siembra directa, proporcionando como resultado dos ambientes totalmente diferentes. Para realizar el análisis de diversidad se consideró evaluar tres meses en ambos sistemas de siembra, teniéndose en cuenta además que, del análisis de la temperatura y la humedad relativa, estos dos factores climáticos no tuvieran una influencia determinante.

 


Tabla 5

Fluctuación poblacional de especies por familia de arañas recolectadas por mes y por trampa de caída

 

Familias y especies

2018

2019

Total de individuos

Oct

Nov

Dic

Ene

Feb

Mar

Abr

May

Jun

Lycosidae

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Hogna albemarlensis

53

61

166

83

92

91

82

28

76

732

Arctosa minuta

8

38

14

15

17

30

18

26

31

197

Hogna hendrickxi

0

3

7

9

0

14

8

8

6

55

Hogna subaustralis

0

2

16

2

0

6

2

0

8

36

Hogna espanola

0

2

4

5

0

2

5

2

4

24

Gnaphosidae

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Zelotes laetus

2

13

12

7

8

14

8

9

4

77

Camillina piura

0

1

0

1

0

0

0

1

0

3

Oxyopidae

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Oxyopes salticus

1

6

3

15

11

10

8

8

8

70

Theridiidae

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Theridion volubile

0

1

1

1

0

2

0

0

1

6

Theridion coldeniae

0

0

0

0

0

0

0

0

1

1

Salticidae

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Salticidae sp. 1

0

1

0

0

0

1

0

1

0

3

Salticidae sp. 2

0

1

0

1

0

0

0

0

0

2

Dictynidae

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Phantyna mandibularis

0

1

0

0

1

0

0

1

1

4

Titanoecidae

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Goeldia patellaris

0

0

1

0

0

1

0

1

1

4

 Araneidae

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Alpaida leucogramma

1

0

1

0

0

0

0

0

1

3

 Miturgidae

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Teminius hirsutus

0

0

0

0

0

1

0

1

0

2

 Trachelidae

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Trachelas daubei

0

0

0

0

0

1

0

0

1

2

Anyphaenidae

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Anyphaenoides pacifica

0

0

0

0

0

0

0

0

1

1

Oonopidae

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Ischnothyreus peltifer

0

0

0

0

1

0

0

0

0

1

Pisauridae

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Pisauridae sp.

0

0

0

1

0

0

0

0

0

1

Scytodidae

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Scytodes sp.

0

0

0

0

0

0

0

0

1

1

Tetragnathidae

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Glenognatha argyrostilba

0

0

1

0

0

0

0

0

0

1

 

Tabla 6

Fluctuación poblacional de familias y especies de arañas adultas recolectadas con red entomológica

 

Familias y especies

2018

2019

Total de individuos

Oct

Nov

Dic

Ene

Feb

Mar

Abr

May

Jun

Tetragnathidae

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Tetragnatha nitens

43

11

34

14

0

0

9

31

5

147

Tetragnatha elongata

8

13

9

1

0

0

0

4

16

51

Glenognatha argyrostilba

2

0

3

0

0

0

0

3

0

8

Leucage sp.

0

0

0

0

0

0

1

0

0

1

Oxyopidae

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Oxyopes salticus

4

1

8

1

0

0

0

8

1

23

Oxyopes incantatus

0

0

0

0

0

0

0

0

1

1

Theridiidae

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Theridion volubile

2

4

0

0

0

0

0

2

1

9

Theridion sp. 2

0

1

1

0

0

0

0

0

3

5

Theridion melanostictum

0

1

0

2

0

0

0

0

0

3

Theridion coldeniae

1

0

1

0

0

0

0

0

0

2

Salticidae

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Salticidae sp. 1

0

2

3

0

0

0

0

2

0

7

Salticidae sp. 2

0

0

1

1

0

0

0

0

1

3

Salticidae sp. 3

0

0

0

1

0

0

0

0

0

1

Salticidae sp. 4

0

0

1

0

0

0

0

0

0

1

Linyphiidae

 

 

 

 

 

 

 

 

 

0

Mermessus denticulatus

0

0

1

1

0

0

0

2

0

4

Mermessus sp.

0

0

0

0

0

0

0

2

0

2

Labicymbium sp.

0

0

1

0

0

0

0

0

0

1

 

 

 

 

Tabla 7

Fluctuación poblacional de especies por familia de arañas recolectadas mediante observación directa

 

Familias y especies

2018

2019

Total de individuos

Oct

Nov

Dic

Ene

Feb (*)

Mar (*)

Abr

May

Jun

Tetragnathidae

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Tetragnatha nitens

3

6

8

2

0

0

3

6

2

30

Tetragnatha elongata

1

2

2

1

0

0

0

2

2

10

Theridiidae

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Theridion coldeniae

0

2

1

1

0

0

0

3

2

9

Theridion sp. 2

0

2

1

1

0

0

0

1

2

7

Theridion volubile

0

0

3

0

0

0

0

3

1

7

Theridion melanostictum

0

1

0

1

0

0

0

1

1

4

Theridion sp. 3

0

1

1

0

0

0

0

0

2

4

Oxyopidae

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Oxyopes salticus

0

0

1

1

0

0

1

3

1

7

Oxyopes incantatus

0

1

1

0

0

0

1

0

2

5

Lycosidae

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Arctosa minuta

2

2

0

0

0

0

0

2

1

7

Araneidae

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Alpaida leucogramma

0

2

1

0

0

0

0

2

1

6

Thomisidae

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Misumenops sp.

0

0

2

1

0

0

1

1

1

6

Linyphiidae

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Mermessus denticulatus

0

0

2

1

0

0

1

0

0

4

Labicymbium sp.

0

0

1

0

0

0

1

0

1

3

Miturgidae

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Teminius hirsutus

0

1

0

0

0

0

1

0

2

4

Dictynidae

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Phantyna mandibularis

0

1

1

0

0

0

0

1

0

3

(*) = ausencia de cultivo durante febrero y marzo.

 


Abundancia de arañas. La mayor abundancia en el sistema de siembra trasplante se registró durante el tercer mes (diciembre) y la menor en el primer mes (octubre) (Tabla 8).  En el sistema de siembra directa hubo una menor abundancia, pero igualmente la mayor abundancia se presentó en el tercer mes (junio) y la menor durante el primer mes (Tabla 9).

Riqueza de arañas. La riqueza especifica fue ligeramente mayor en el sistema de siembra directa (31 especies- Tabla 9) y menor en el sistema de siembra por trasplante (28 especies -Tabla 8).


 

Tabla 8

Fluctuación poblacional de familias y especies de arañas adultas recolectadas mediante tres técnicas de colecta en la modalidad de siembra por trasplante

 

Especies y/o morfoespecies

Siembra trasplante

Total

 

Oct

Nov

Dic

 

1. Hogna albemarlensis (Banks, 1902)

53

75

166

294

2. Tetragnatha nitens (Audouin, 1826)

46

17

42

105

3. Arctosa minuta F.O. Pickard - Cambridge, 1902

10

40

14

64

4. Tetragnatha elongata Walckenaer, 1841

9

15

11

35

5. Zelotes laetus (O. Pickard-Cambridge,1872)

2

13

12

27

6. Oxyopes salticus Hentz, 1845

5

7

12

24

7. Hogna subaustralis (Strand, 1908)

0

2

16

18

8. Theridion volubile Keyserling, 1884

2

5

4

11

9. Hogna hendrickxi Baert & Maelfait, 2008

0

3

7

10

10. Alpaida leucogramma (White, 1841)

2

2

3

7

11. Glenognatha argyrostilba (O.Pickard-Cambridge, 1876)

2

0

4

6

12. Hogna espanola Baert & Maelfait, 2008

0

2

4

6

13. Salticidae sp. 1

0

3

3

6

14. Phantyna mandibularis (Taczanowski, 1874)

1

3

1

5

15. Theridion coldeniae (Baert & Maelfait, 1986)

1

2

2

5

16. Theridion sp. 2

0

3

2

5

17. Mermessus denticulatus (Banks, 1898)

0

0

3

3

18. Misumenops sp.

0

0

3

3

19. Labicymbium sp.

0

1

2

3

20. Mermessus sp.

0

0

2

2

21. Oxyopes incantatus (Santos, 2017)

0

1

1

2

22. Parawixia kochi (Taczanowski, 1873)

1

0

1

2

23. Salticidae sp. 2

0

2

0

2

24.  Theridion melanostictum Pickard-Cambridge, 1876

0

2

0

2

25. Theridion sp. 3

0

1

1

2

26. Camillina piura Platnick & Shadab, 1982

0

1

0

1

27. Goeldia patellaris (Simon, 1893)

0

0

1

1

28. Teminius hirsutus (Petrunkevitch, 1925)

0

1

0

1

Total

134

200

319

653

 

Tabla 9

Fluctuación poblacional de familias y especies de arañas adultas recolectadas mediante tres técnicas de colecta en la modalidad de siembra directa

 

Especies y/o morfoespecies

Siembra directa

Total

 

Abr

May

Jun

 

1. Hogna albemarlensis (Banks, 1902)

82

28

76

186

2. Arctosa minuta F.O. Pickard - Cambridge, 1902

18

28

32

78

3. Tetragnatha nitens (Audouin, 1826)

12

37

7

56

4. Oxyopes salticus Hentz, 1845

9

19

10

38

5. Tetragnatha elongata Walckenaer, 1841

0

6

18

24

6. Hogna hendrickxi Baert & Maelfait, 2008

8

8

6

22

7. Zelotes laetus (O. Pickard-Cambridge,1872)

8

9

4

21

8. Hogna espanola Baert & Maelfait, 2008

5

2

4

11

9. Hogna subaustralis (Strand, 1908)

2

0

8

10

10. Theridion volubile Keyserling, 1884

0

5

3

8

11. Theridion coldeniae (Baert & Maelfait, 1986)

0

3

3

6

12. Theridion sp. 2

0

1

5

6

13. Alpaida leucogramma (White, 1841)

0

2

3

5

14. Oxyopes incantatus (Santos, 2017)

1

0

3

4

15. Teminius hirsutus (Petrunkevitch, 1925)

1

2

1

4

16. Glenognatha argyrostilba (O.Pickard-Cambridge, 1876)

0

3

0

3

17. Mermessus denticulatus (Banks, 1898)

1

2

0

3

18. Misumenops sp.

1

1

1

3

19. Phantyna mandibularis (Taczanowski, 1874)

0

1

2

3

20. Salticidae sp. 1

0

3

0

3

21. Goeldia patellaris (Simon, 1893)

0

1

1

2

22. Labicymbium sp.

1

0

1

2

23. Mermessus sp.

0

2

0

2

24. Theridion melanostictum Pickard-Cambridge, 1876

0

1

1

2

25. Theridion sp. 3

0

0

2

2

26. Anyphaenoides pacifica (Banks,1902)

0

0

1

1

27. Camillina piura Platnick & Shadab, 1982

0

1

0

1

28. Leucage sp.

1

0

0

1

29. Salticidae sp. 2

0

0

1

1

30. Scytodes sp.

0

0

1

1

31. Trachelas daubei (Schmidt, 1971)

0

0

1

1

Total

150

165

195

510

 

 


Diversidad de arañas. El valor más alto de la diversidad de Shanon –Wiener se presentó en la modalidad de siembra directa (H´= 2,28) que se corresponde con el mayor número de especies registradas y el menor en la modalidad de siembra por trasplante (H´= 2,02); en cambio el índice de dominancia de Simpson fue mayor en la modalidad de siembra al trasplante (ƛ = 0,25) que se corresponde con el mayor número de individuos adultos de arañas colectados y el menor en la siembra directa (ƛ = 0,18) (Tabla 10).

 

Tabla 10

Análisis de diversidad de la araneofauna en el cultivo de arroces recolectada mediante tres técnicas de colecta en dos modalidades de siembra

 

Índices

Periodos de evaluación

Oct-dic 2018

Abr- jun 2019

Modalidad de siembra

Trasplante

Directa

Riqueza especifica (S)

28

31

Shannon -Wiener(H´)

2,02

2,28

Dominancia de Simpson (ƛ)

0,25

0,18

Diversidad de Simpson (1- ƛ)

0,75

0,82

 

Gremios de arañas. El gremio de las corredoras terrestres fue el más abundante en ambas modalidades de siembra, siendo ligeramente mayor en la de siembra directa (65,7%). Los gremios que registraron las menores abundancias fue el de las emboscadoras en la modalidad de siembra a trasplante (0,5%) y en la de siembra directa el de las corredoras de follaje (0,2%). Así mismo, la mayor riqueza de gremios se presentó en ambos casos a partir del segundo y tercer mes cuando en ambas modalidades se encuentra una mayor cobertura vegetal y especialmente en el tercer mes cuando los cultivos ingresan a la etapa fenológica de floración.

 

Arañas como depredadores en el cultivo de arroz

Del total de 4266 ejemplares recolectados, 2626 (63%) correspondieron a estadios juveniles. El predominio de arañas al estado juvenil guarda relación con lo reportado por Pérez-Guerrero et al. (2009) y Almada et al. (2012), para cultivos de algodón en España (91,07%) y Argentina (60%) respectivamente. Además, coinciden con otros trabajos realizados en cultivos y áreas naturales (Almada et al., 2012; Avalos et al., 2013), donde más del 60% fueron individuos juveniles. Esto podría deberse a una constante colonización de las arañas juveniles desde los márgenes del cultivo hacia éste (Almada et al., 2012).  Las densidades de arañas varían con la fenología del cultivo, en ambos tipos de siembra se ha observado que las poblaciones se incrementan gradualmente con la edad del cultivo, esto concuerda con los resultados encontrados y con lo que reporta (Liu et al., 2003).

Del examen de los ejemplares adultos que constituyó el 37% de los ejemplares recolectados se tuvo un total de 37 morfo especies, algunas de las cuales lograron ser identificadas a nivel de especie y otras a nivel de género y se muestra la dominancia de H. albemarlensis sobre el resto de las especies recolectadas. No existe información específica sobre estas especies en cultivos de arroz, pero si información general sobre la presencia de la familia Lycosidae en agroecosistemas del cultivo de arroz. Rodrigues et al. (2013), por ejemplo, refieren que las arañas se encuentran en casi todos los ecosistemas, incluidos los agrícolas como el arroz y que, entre las familias de arañas al estado adulto presentes en los cultivos de arroz, una de las más abundantes es Lycosidae, situación similar es reportada para el continente asiático por Tahir & Butt (2010) en Pakistán donde encontraron que Lycosidae fue la familia dominante y comprendió el 77,67% de la captura total, del mismo modo  Jayakumar & Sankari, (2010) en India reportan un total de ocho especies de arañas pertenecientes a siete familias diferentes, siendo Lycosa pseudoannulata Boes & Stand una de las que se presenta en las diferentes etapas del cultivo y cuando la población de plagas se incrementa e indican que las poblaciones más altas suceden en la etapa de crecimiento temprano, resultados similares encontró Butt & Tahir (2010) para Pakistán al investigar los factores responsables de la coexistencia de tres especies de arañas cazadoras (Lycosa terrestris, Pardosa birmanica y Oxyopes javanus).

Para Sudamérica, Bao et al. (2019) en Uruguay indican que las familias más abundantes fueron Lycosidae, Linyphiidae, Anyphaenidae y Tetragnathidae (26%, 25%, 20% y 12%, respectivamente) y representaron más del 80% de la abundancia relativa total. Fritz et al., (2008), para Brasil, manifiestan que las familias de arañas comúnmente encontradas en arroz irrigado son Araneidae, Lycosidae, Tetragnathidae y Salticidae, así mismo Bastidas et al. (1994) para Colombia, reportan haber registrado para el mismo cultivo 11 familias, representadas en 29 especies.

La abundancia de los individuos por familia también estaría relacionada con las técnicas de colecta y esfuerzos de muestreo realizados en cada investigación, siendo cada resultado muy particular, como el de este trabajo de investigación. Al respecto (Rubio et al., 2007) sostienen que la gran abundancia de Lycosa sp.1, posiblemente se deba, a las técnicas de muestreo utilizadas, ya que según estos autores las trampas de caída y el cernido de hojarasca, son métodos eficientes para la colecta de este tipo de araña, cuya característica principal de comportamiento es que presenta una actividad epigea.

En lo correspondiente a especies de la familia Tetragnathidae para el continente asiático, se ha registrado a Tetragnatha maxillosa Thorell para Filipinas (Shepard et al. 1987), quienes a su vez destacan que los ejemplares de esta especie descansan en la parte superior de las plantas de arroz y construyen redes débiles durante la noche para depredar cigarritas. comportamiento similar observado en el trabajo realizado. Butt & Tahir (2010) para Pakistán registran a T. javana., Katti et al., (2001) para la India y destacan que arañas del género Tetragnatha son comunes en los campos de arroz.  Bambaradeniya et al. (2004) en Sri Lanka reportan para el citado cultivo a las especies T. javana y T. nitens, estas dos especies también son reportadas por Shawer et al. (2012) en Egipto.

Para Sudamérica; Fritz et al. (2008) en Brasil, señalan a Tetragnatha como el género más abundante en colectas de arañas, Rodrigues et al. (2008) para el mismo país reporta la presencia de Tetragnatha nitens, y Tetragnatha aff. jaculator y así mismo, Rodrigues et al. (2005) y Rodrigues et al. (2013) destacan la dominancia de T. nitens (46,8%) y T. jaculator (14,8%).  Vivas-Carmona & Astudillo-García (2017) en Venezuela identificaron a las especies T. nitens, T. pallescens, T. vermiformis y resaltan que estas especies constituyen un excelente método de control natural de las plagas importantes y que desde el punto de vista ecológico constituyen un componente elemental en el manejo integrado de plagas en el cultivo de arroz. 

Con relación a la especie Oxyopes salticus. Rodrigues et al. (2008) en muestreos realizados con jama entomológica en Brasil encontró niveles poblacionales similares a los encontrados en el estudio realizado, en el orden de haber recolectado estos autores, solamente cuatro ejemplares. En el caso del presente trabajo de investigación, dichos valores son similares con número de dos a cinco en las observaciones realizadas por m2. Sin embargo, en las colectas con red entomológica, los mayores valores registrados fueron de 14 individuos adultos durante el periodo octubre 2018-enero 2019 y de nueve durante abril-junio 2019, pero mayor, en las trampas de caída que en un periodo continuo de colecta se recolectaron 70 ejemplares.

Cabe indicar que durante los dos periodos de evaluación y las dos modalidades de siembra no se observó ni se colectó a una especie del género Argiope que fuera observada por el autor principal de este estudio con mucha frecuencia en campos de cultivos de arroz durante los años 1986-2000.

En lo referente a los dos factores climáticos que se tuvieron en cuenta en esta investigación para su análisis, como son la temperatura y la humedad relativa su influencia no fue relevante, similares resultados son reportados por Vijaykumar (2004) quien no encontró correlación significativa de la temperatura y humedad con las arañas en un cultivo de arroz en India, situación parecida es reportada por Rodrigues et al. (2009) para Brasil.

En lo concerniente a la riqueza encontrada en el presente trabajo de investigación (37 especies y/o morfoespecies y 18 familias) esta es similar a la encontrada en Brasil por Rodrigues et al. (2008) (38 morfoespecies y 14 familias); pero mucho menor a lo citado por Sudhikumar et al. (2005) para la India.

Los resultados indican que hay varios nuevos registros para Perú y se ha observado la ocurrencia de varias especies que sólo han sido reportadas para las islas Galápagos (Ecuador) (Baert et al., 2008, Baert & Maelfait, 1986) así tenemos: A. minuta, H. albemarlensis, H. española, Terminius hirsutus, Ischnothyreus peltifer, Oxyopes incantatus, Theridion coldeniae, Theridion melasnotictum y Trachelas daubai.

En este estudio Lycosidae, Theridiidae y Tetragna-thidae fueron las familias con mayor riqueza de especies (14%, 14% y 11%, respectivamente); Sudhikumar et al., (2005) para la India, registraron a Salticidae, Tetragnathidae y Araneidae con mayor número de especies con el 18%, 13% y 12%. La mayor riqueza de especies de Lycosidae podría deberse que esta familia hace sus nidos en áreas circundantes a los campos de cultivo, donde existe una menor perturbación antrópica por el manejo agronómico y de la maquinaria.

 

Análisis de la fluctuación poblacional de adultos por sistemas de siembra

La mayor abundancia de arañas al estado adulto se presenta durante la fase de floración- maduración en los dos sistemas empleados. La mayor población de arañas en el sistema de siembra trasplante podría deberse a que en este sistema existe mucho mayor espacio entre golpes (grupos de plantas)  sobre todo en el tercio medio e inferior de las plantas, posibilitando mejores refugios y en los cuales las arañas pueden desplazarse con mayor facilidad más no así en el sistema de siembra directa, donde los espacios son muy reducidos y las plantas están muy juntas y no propician condiciones para hábitats o refugios para las arañas, dificultando de alguna manera el desarrollo de sus poblaciones y desplazamientos, afectando más a los gremios de las tejedoras orbiculares, las acosadoras y las tejedoras en sabana.  Cabe indicar que después de realizado el trasplante la colonización es lenta y la recuperación de las poblaciones de arañas se logra mediante la reproducción, pero también de la inmigración de los hábitats circundantes tal como lo expresan Bao et al. (2019), Thorbek & Topping (2005), Thorbek & Bilde (2004) y Ryptstra et al. (1999).

 

Análisis de la fluctuación poblacional de adultos por técnicas de colecta

La técnica de colecta de trampa de caída registró la mayor asociación de especies y familias, pero igual número de gremios con las otras dos técnicas exceptuando los gremios de emboscadoras (ausen-tes en las trampas de caída) y la de corredoras de follaje (ausentes en la de observación directa y barrido con red entomológica). Aunque por el mayor número de individuos colectadas en trampas de caída, el gremio de las corredoras terrestres resultó ser la más abundante, al parecer por sus mismos hábitos de nidificación que tienen, se desarrollan en los terrenos que permanecen inalterados después de los bordes del cultivo y de la vegetación herbácea y es posible que puedan eludir de alguna manera la alta presión de insecticidas que se utiliza en el cultivo de arroz, más no así las tejedoras orbiculares y de sabana, que para su multiplicación necesitan de la arquitectura de la planta para construir sus redes y estas están mucho mayor expuestas a las aplica-ciones de insecticidas. Esto pudo ser observado durante el desarrollo del estudio, cuando se realizaba una aplicación de insecticidas para dismi-nuir la alta presión poblacional de T. orizicolus sobre el cultivo, la población de arañas descendía. Esto concuerda con lo argumentado por Amalin et al. (2001) quienes indican que las prácticas de manejo agronómico convencionales, como, por ejemplo, el trasplante, la aplicación de insecticidas, fungicidas y herbicidas, que tienen efectos indirectos sobre la población de arañas, los herbicidas pueden reducir la población de insectos fitófagos que se desarrollan en la vegetación herbácea de bordes, lo que resulta en una menor disponibilidad de presas para las arañas.


 

CONCLUSIONES

 


En lo que corresponde a las arañas como depredadores no específicos de insectos plagas y en relación con T. orizicolus se registró una alta riqueza y abundancia en el agroecosistema del cultivo de arroz, estando presentes con fluctuaciones en las diferentes etapas fenológicas del cultivo, iniciándose en ambas modalidades de siembra con bajas poblaciones, las que se fueron incrementando en la medida que la plantación ofrecía una mayor arquitectura y frondosidad cubriendo los espacios y presentando un mayor canopi, con lo cual se ofrecía una mayor presencia de insectos fitófagos y en especial las poblaciones del insecto plaga T. orizicolus y otras especies de fitofagos. Se recolectaron 18 familias, que representaban siete gremios, el más abundante fue el de las corredoras terrestres, las familias más abundantes fueron Lycosidae (65,05%), Tetragnathidae (15,15%) y Oxyopidae (6,48%). Se identificaron 37 especies y/o morfoespecies. Las más abundantes fueron H. albemarlensis (45,57%), A. minuta (12,46%) y T. nitens (10,63%).  La cosecha y la ausencia del principal insecto fitófago marca un inicio en la disminución de la población de arañas. La temperatura y humedad no mostraron una marcada influencia en la araneofauna que pudo registrarse en el estudio realizado. El gremio de las tejedoras orbiculares y en especial la familia Tetragnatidae resulta interesante porque su presencia puede ser corroborada por el personal profesional y técnico e incluso el agricultor, durante todas las fases del cultivo por los hábitos de comportamiento que presenta, al descansar en las hojas del tercio superior de las plantas, pero este hábito hace que sus poblaciones sean más afectadas cuando se realizan aplicaciones de agroquímicos, especialmente insecticidas. Este estudio representa la primera contribución al conocimiento de su biodiversidad al agro ecosistema del arroz en valle de Tumbes.  Por lo tanto, se hace necesario continuar evaluando la biodiversidad de las arañas del cultivo, en otras áreas diferentes a las del estudio, así mismo es importante realizar estudios de capacidad de depredación de las especies de arañas más importantes y poder valorar el rol que estas cumplen en la regulación de los principales insectos plagas que se presentan en el cultivo de arroz. Del mismo modo se hace necesario evaluar el efecto real que los distintos plaguicidas ejercen sobre la población de arañas especialmente  las  del gremio de las tejedoras orbiculares.


 

AGRADECIMIENTOS

 


A la Dra. Diana Silva Ávila profesora investigadora de la Universidad Nacional Mayor de San Marcos y al Juan Manuel Andia Navarro investigador Asociado al Museo de Entomología "Klaus Raven Büller" de la Universidad Nacional Agraria La Molina por la identificación de las especies de arañas. A las Ingenieras Agrónomas Rosa Emelda Cornejo Hidalgo y Patricia Cruz Córdova, por su apoyo en las tareas de campo y de laboratorio. A La Universidad Nacional de Tumbes por el financiamiento del trabajo de investigación con recursos del canon y sobre canon en la modalidad de Proyectos de investigación en ciencias aplicadas (nivel inicial).


 

REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS

 


Aguilera, M. A. & Casanueva, M. E. (2005). Arañas chilenas, estado actual del conocimiento y clave para las familias de Araneomorphae. Gayana 69(2),201-224.

Almada, M., Sosa, M. & González, S. (2012). Araneofauna (Arachnida, Araneae) en cultivos de algodón (Gossypium hirsutum) transgénicos y convencionales en el norte de Santa Fe, Argentina. Revista de Biología Tropical. 60(2), 611-623.

Amalin, D. M., Peña, J. E., Mcsorley, R., Browning, H. W. & Crane, J. H. (2001). Comparison of different sampling methods and effect of pesticide application on spider population in lime orchards in south Florida. Environ. Ent., 30, 1021-1027.

Avalos, G., Bar, M., Oscherov, E. & González, A. (2013). Diversidad de Araneae en cultivos de Citrus sinensis (Rutaceae) de la Provincia de Corrientes, Argentina. Revista de Biología Tropical. 61(3), 1243-1260.

Backus, E. A., Serrano, M.  S. & Ranger, C.  M. (2005). Mechanisms of hopperburn, an overview of insect taxonomy, behavior, and physiology. Annu. Rev. Entomol. 50, 125–151.

Baert, L. & Maelfait, J. P. 1986. A contribution to the knowledge of the spider fauna of Galápagos (Ecuador). Bulletin van het Koninklijk Belgisch Instituut voor Natuurwetenschappen, Entomologie, 56, 93-123.

Baert, L., Maelfait, J.P. & Hendrickx, F. (2008). The wolf spiders (Araneae, Lycosidae) from the Galápagos Archipelago. Bulletin de l'Institut Royal des Sciences Naturelles de Belgique, Entomologie 78, 5-37.

Bambaradeniya, C.N.B., Edirisinghe, J.P., Hendrickx, De Silva, D.N., Gunatilleke, C.V.S., Ranawana, K.B. & Wijekoon, S. (2004). Biodiversity associated with an irrigated rice agro-ecosystem in Sri Lanka. Biodiversity and Conservation 13, 1715-1753.

Bao, L., Ginella, J., Cadenazzi, M., Castigglioni, E., Martinez, S., Casales, L., Caraballo, M., Laborda, A. & Simo, M. (2019). Spider assemblages associated with different crop stages of irrigated rice agroecosystems from eastern Uruguay. Biodiversity Data Journal 6, e24974. 

Bastidas, H., Pantoja, A., Murillo, A., Zuluaga, J. I. & Duque, M. C. (1994). Reconocimiento, fluctuación y pruebas de consumo de presas por arañas en cultivos de arroz, en el valle del Cauca. Revista Colombiana de Entomología 20(3),149-160.

Butt, A. & Tahir, H. (2010). Resource partitioning among five agrobiont spiders of a rice ecosystem. Zoological Studies 49(4), 470-480.

Cuevas, A. (1994). Las arañas, Controladores naturales de insectos fitófagos en el cultivo de arroz en Norte de Santander. Revista Colombiana de Entomología 2083), 179-186.

Fritz, L., Arden, E., Pandolfo, M., Martins, S., Vargas, J. & Fiuza, L. (2008). Agroecosistemas orizicolas irrigados, Insetos-Praga, Inimigos Naturais. Oecol. Bras.12 (4), 720- 732.

Gutaker, R. M., Groen, S. C., Bellis, E. S., Choi, J. Y., Pires, I. S., et al. (2020). Genomic history and ecology of the geographic spread of rice. Nat. Plants 6, 492-502.

Huffaker, C. B. & Messenger, P. S. (1976). Theory and practice of biological control. New York, Academic Press.

Jocqué, R. & Dippenaar-Shoeman, A. S. (2006). Spider families of the world. Tervuren, Bel­gium, Royal Museum for Central Africa. 336 p.

Jayakumar, S. & Sankari, A. (2010). Spider population and their predatory efficiency in different rice establishment techniques in Aduthural, Tamil Nadu. Journal Biopesticides 3 (1 Special Isuue) 020-027.

Kaston, B. J. (1970). How to know the spiders? WM. C. Brown Company Publishers Dubuque, Iowa. 220 pp.

Katti, G., Pasalu, I. C., Varma, N. R. G. & Dhandapani, N. (2001). Quantification of natural biological control in rice ecosystem for possible exploitation in rice IPM. Indian Journal of Entomology 63,439-448.  

Levi, H. W. (2002). Keys to the genera of araneid orbweavers (Araneae, Araneidae) of the Ame­ricas. Journal of Arachnology, 30,527–562.

Liu, W. X., Hou, M. L., Wan, F. H. & Wang, F. L. (2003). Temporal and spatial niche dynamics of spiders and their control effects on cotton bollworms in transgenic Bt. cotton fields. Entomol. Know., 40,160- 163.

Liu, W., Hajano, J. U. & Wang, X.  (2018). New insights on the transmission mechanism of tenuiviruses by their vector insects. Curr. Opin. Virol. 33, 13–17.

Martin, J. E., Bernal E. K., Cruz, M. G., Zhu-Salzman K., Way M. O. & Badillo-Vargas, I. E. (2019). Assessing the Potential Infection of Tagosodes orizicolus (Hemiptera, Delphacidae) by Rice Hoja Blanca Virus in Texas Journal of Economic Entomology, 113(2), 1018-1022 - November 2019

Ministerio de Agricultura y Riego-MINAGRI. (2019). Encuesta nacional de intenciones de siembra 2019. Lima, Perú, Dirección general de seguimiento y evaluación de políticas dirección de estadística agraria

Ministerio de Agricultura y Riego-MINAGRI. (2020). Plan Nacional de Cultivos Campaña Agrícola 2019- 2020. Lima, Perú, Dirección general de seguimiento y evaluación de políticas dirección de estadística agraria.

Morales, F. J. & Jennings, P. R. (2010). Rice Hoja Blanca, a complex plant– virus–vector pathosystem. CAB Rev. 5, 1–15.

Pérez-Guerrero, S., Tamajón, R., Aldebis, H. & Vargas-Osuna, E. (2009). Comunidad de arañas en cultivos de algodón ecológico en el sur de España. Revista colombiana de Entomología. 35(2), 168-172.

Rodrigues, E. N. L., de S. Mendonca, M. & Ott, R. (2008). Fauna de aranhas (Arachnida, Milton Araneae) em diferents estagios do cultivo do arroz irrigado em Cachoeirinha, RS, Brasil. Iheringia, Sér. Zool. Porto Alegre. 98(3), 362-371.

Rodrigues, E., de Mendonca, M., Fritz, L. L., Heinrichs, E. A. & Fiuza, L. (2013). Effect of the insecticide Lambda-cyhalotrina on rice spider populations in southern Brazil. Zoología 30(6), 615-622.

Rodrigues, E. N. L., M.S. Mendonca, J. R. & Ott. R. (2009). Spider diversity in a rice agroecosystem and adjacent areas in southern Brazil. Revista Colombiana de Entomología 35, 78-86.

Rodrigues, E. N. L., Podgaiski, L. R., Ott, R., Oliveira, J. V. & JR, M. M. (2005). Aranhas e suas formas de predacao na cultura de arroz irrigado (Oryza sativa) na Depresao Central, RS. pp, 31-32.  Anais do IV Congresso Brasileiro de Arroz irrigado, Santa María. 658 pp.

Rubio, G. D., Minoli, I. & Piacentini, L. (2007). Patrones de abundancia de cinco especies de arañas lobo (Araneae, Lycosidae) en dos ambientes del Parque Nacional Mburucuyá, Corrientes, Argentina. Brenesia, 67, 59-67.

Ryptstra, A. L., Carter, P.E., Balfour, R.A. & Marshall, S.D. (1999). Architectural feature of agricultural habitats and their impacto in the spider in habitants. Journal of Arachnology 27(1), 371-377.

Shawer, M. B., Sharshir, F. A., Hendawy, A. S. & Refaei, E. A. (2012).  Survey of True Spiders in the Egyptian Rice Fields at Rasheid Region Beheira Gavarnarte. J. Plant Prot. and Path., Mansoura Univ., Vol. 3 (8), 835 – 842.

Shepard, B. M., Barrion, A. T. & Litsinger, J. A. (1987). Friends of the Rice Farmer, Helpful Insects, Spiders, and Pathogens. International Rice Research Institute. Los Baños, Laguna, Philippines. 127 pp.

Sudhikumar, A., Mundackatharappel, J., Enathayil, S. & Pothalil, A. (2005). Seasonal variation in spider abundance in Kuttanad rice agroecosystem, Kerala, India (Araneae). European Arachnology 2005 (Deltshev, C. & Stoev, P., eds) Acta zoologica bulgarica, Suppl. No. 1, pp. 181-190.

Tahir, H. & Butt, A. (2009). Effects of Different Management Practices and Field Margins on the Abundance of Ground Spiders in Rice Ecosystems. J. Zool., 41(2), 85-93.

Thorbek, P. & Bilde, T. (2004). Declines of generalist arthropod predators due to mortality, emigration, or habitat disruption after tillage and grass cutting. Journal of Applied Ecology 41, 526‑538.

Thorbek, P. & Topping, C. J. (2005). The influence of landscape diversity and heterogeneity on spatial dynamics of agrobiont linyphiid spiders, an individual-based model. BioControl, 50, 1‑33.

Tikader, B. K. & Malhotra, M. S. (1980). Lycosidae (Wolf spiders). Fauna India (Araneae), 1, 248-447.

Uetz, G. W., Halaj, J. & Cady, A. B. (1999). Guild Structure of Spiders In Major Crops (1999). The Journal of Arachnology 27, 270-280.  

Van Groenigen, K. J., van Kessel, C. & Hungate, B. A., (2013). Increased greenhouse-gas intensity of rice production under future atmospheric conditions. Nat. Clim. Chang. 3, 288-291.

Vijaykumar, P. B. V. (2004). Spider fauna of paddy ecosystem in selected areas of Tungabhadra Project in Karnataka. Journal of Agricultural Sciences 17 (3), 584-585. 

Vinothkumar, B. (2012). Diversity of spider fauna in upland rice agroecosystem at Gudalur valley in Tamilnadu.  Journal of Biological Control, 26 (3), 222–229.

Vivas-Carmona, L. E. & Astudillo-García, D.H. (2017). Cuatro especies de arácnidos (Arachnida, Araneae) en arrozales de Calabozo Estado Guárico, Venezuela. J. Selva Andina Biosphere 5(2),116-123.

World Spider Catalog. Version 21.0. (2019). Natural History Museum Bern, online at http://wsc.nmbe.ch, (acceso 15/12/2019).

World Spider Catalog. Version 21.0. (2020). Natural History Museum Bern, online at http://wsc.nmbe.ch, (acceso 15/02/2020).