El arándano es un fruto cada vez más valorado en el mercado global debido a sus destacados atributos nutricionales y funcionales. Posee un perfil rico en vitaminas, fibra dietética y compuestos fenólicos como antocianinas y flavonoides (Tobar et al., 2021; Azari et al., 2022; Duan et al., 2022; Wei et al., 2023; Sun et al., 2022). Estos pigmentos le confieren su característico color azul y un elevado potencial antioxidante, ligado a beneficios para la salud humana, actividad anticancerígena, cardioprotector y antiinflama-toria (Stull et al., 2024; Silva et al., 2020). Su sabor agradable y el creciente reconocimiento de sus propiedades funcionales han impulsado la demanda de arándanos frescos a nivel mundial. Sin embargo, estas ventajas saludables y organolépticas conllevan desafíos postcosecha: el fruto del arándano tiene una piel muy fina y un alto contenido de agua que lo hace frágil y permeable, sumado a su metabolismo acelerado lo hace extremadamente perecedero (Xing et al., 2021; Liu et al., 2023). De hecho, sin conservación adecuada, la vida útil del arándano en fresco es muy corta lo que dificulta su comercialización a larga distancia.

El problema postcosecha radica en que el arándano mantiene una alta tasa respiratoria, por lo cual acelera su deterioro metabólico (Falagán et al., 2020). Este consumo continuo de oxígeno y producción de CO₂ acelera la senescencia, provocando pérdida de firmeza, marchitamiento y decoloración del fruto. Simultáneamente, al no contar con una cutícula protectora gruesa, el fruto es muy susceptible a la infección por hongos fitopatógenos como Botrytis y Penicillium que liberan enzimas hidrolíticas y provocan pudriciones postcosecha (Wu et al., 2022). Estos procesos fisiológicos y microbiológicos resultan en una rápida degradación de la calidad organoléptica de textura, aroma y color; pero también nutricionalmente reduciendo el contenido de antocianinas y fenoles del arándano, con cuantiosas pérdidas económicas para la industria y los productores.

Para enfrentar estas limitaciones, se han evaluado numerosas tecnologías postcosecha centradas en reducir la respiración, senescencia del fruto y en controlar la proliferación microbiana. Entre ellas destacan las atmósferas modificadas (CA/MAP) y el enriquecimiento con CO₂, el ozono gaseoso, recubrimientos comestibles a base de quitosano con nanopartículas o aceites esenciales; radiaciones ultravioletas, irradiación gamma y otras. En la práctica, estas técnicas buscan crear entornos poco propicios para el metabolismo acelerado y la actividad patógena. Por ejemplo, Falagán et al. (2020) aplicaron una atmósfera controlada graduada en arándanos ‘Duke’ y observaron que la tasa respiratoria basal disminuyó significativamente, prolongando la vida útil del fruto hasta en un 25% en comparación con el control. De forma complementaria, Smrke et al. (2021) encontraron que almacenar frutos en condiciones de CO₂ moderado (5%) y 5% O₂ ayudaba a mantener los compuestos fenólicos y antocianinas, mientras que atmósferas con CO₂ muy elevadas (≥15%) aceleraban su degradación. Estos resultados confirman que las CA bien dosificadas retardan el metabolismo respiratorio y la senescencia, preservando mejor la calidad nutricional del arándano.

De igual modo, el ozono gaseoso ha recibido atención por su capacidad antimicrobiana y antioxidante. Wu et al. (2022) reportaron que la fumigación con ozono inhibe el crecimiento de Penicillium en los arándanos almacenados, conservando la firmeza del fruto y atenuando la pérdida de sólidos solubles, fenoles totales y antocianinas. El ozono actúa oxidando los hongos patógenos y, al mismo tiempo, puede activar defensas antioxidantes en el fruto. En línea con esto, Gorzelnay et al. (2024) observaron que la aplicación de ozono tras la cosecha incrementó en 10% el contenido de compuestos fenólicos totales y mejoró hasta en 15% – 22% la capacidad antioxidante de arándanos almacenados. Estos estudios indican que el ozono reduce la carga microbiana y ayuda a mantener intactos los antioxidantes de los frutos.

Los recubrimientos comestibles basados en quitosano (CTS) también han demostrado eficacia para prolongar la vida útil del arándano. Xing et al. (2021) mostraron que un recubrimiento de quitosano enriquecido con nanopartículas de TiO₂ ralentizaba la caída de la firmeza y el contenido de vitamina C, así como la degradación de antocianinas y compuestos fenólicos totales durante 28 días a 0 °C. De manera similar, Sun et al. (2025) demostraron que una película de quitosano con aceite esencial de tomillo reducía significativamente la pérdida de peso de arándanos almacenados, al tiempo que impedía la disminución de antocianinas y vitamina C y enlentecía el incremento de malondialdehído (MDA). Otras formulaciones como recubrimientos con cineol o cinamaldehído han mostrado actividad antifúngica, preservando el contenido de fenoles antioxidantes y retrasando el ablandamiento de los frutos. En conjunto, estos tratamientos físicos y de recubrimiento controlan patógenos y contribuyen a mantener la integridad nutricional (fenoles, antioxidantes) del fruto (Xu et al., 2023).

Además, se han explorado radiaciones lumínicas como estrategia no química. La radiación UV-C postcosecha es conocida por destruir ADN microbiano; Wang et al. (2022) reportaron que la aplicación de UV-C a los arándanos retrasó la senescencia y elevó la actividad antioxidante del fruto. Paralelamente, tratamientos de luz visible en longitudes específicas pueden inducir rutas metabólicas de defensa en el fruto. Wei et al. (2023) observaron que la luz azul incrementó la expresión de genes clave de la biosíntesis de antocianinas y aumentó el contenido de estos pigmentos en arándanos, reforzando su capacidad antioxidante. De forma análoga, Liu et al. (2025) informan que irradiaciones postcosecha con luz UV-A y luz azul potenciaron la acumulación de antocianinas aciladas en frutos de arándano, sugiriendo un papel regulador de estas longitudes de onda en las vías biosintéticas. Aunque la irradiación gamma de bajo dosis ha sido utilizada para desinfectar hortalizas, en arándanos estudios recientes indican que dosis moderadas pueden inhibir microorganismos y extender la vida en anaquel.

A pesar de estos avances, los estudios suelen evaluar las tecnologías de forma aislada o en combinaciones específicas, sin ofrecer un panorama integrado de su eficacia relativa. Dado que las pérdidas postcosecha del arándano pueden superar el 20% - 30% en condiciones comerciales, es imprescindible evaluar de manera sistemática y comparativa estas tecnologías individuales y combinadas para optimizar su aplicación en la cadena de frío. Comprender cómo se superponen o potencian sus efectos, por ejemplo, combinar recubrimientos con atmósferas modifi-cadas o radiaciones germicidas podría revelar siner-gias útiles para minimizar el deterioro. En este contexto, se requiere una síntesis exhaustiva de la literatura reciente que integre resultados sobre las tasas respiratorias del arándano y las tecnologías postcosecha aplicadas.

El objetivo general de este estudio fue conocer las tasas de respiración de diversas variedades de Vaccinium corymbosum L., identificando los factores abióticos que la afectan y describir las diversas tecnologías que se emplean a nivel postcosecha.

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Figura 2. Factores abióticos que influyen en la tasa de respiración de Vaccinium corymbosum. Nota. Los valores de CO₂ se expresan en porcentaje (% v/v) o en kilopascales (kPa), los niveles de O₂ en porcentajes en atmósferas modificadas o controladas. La temperatura (°C), humedad relativa (HR) en porcentaje (%). “↑” indica incremento de la tasa de respiración y aceleración de la maduración, mientras que “<” indica valores menores a, > es valores superiores.

Tabla 1

Tasas de respiración en Vaccinium corymbosum influenciado por las temperaturas

Variedades	Temperatura
Variedades	20 °C		15 °C	5 °C	0 °C
Misty	38,4 - 45,0
Powderblue		48-50
Premier		49-66
Miss Jackie		42
Miss Lilly		48-67
Suziblue	32,8 ± 1,7	75
Emerald	28,5 - 26,6	47-69	32-43	10,0-14,8	5,5-7,9
Snowchaser	39,6 ± 0,5	45-61	31-39	10,0-14,3	5,9-8,4
Farthing		40-55	28-37	8,5-12,0	5-7,3
San Joaquin		52-73	35-45	10,1-14,7	5.9-8,3
Kestrel		59-77	38-50	10,5-16,6	6,3-10,2
Abundance		42-57	31-40	7,9-13,2	4,1-8.8
Primadona		56-74	40-50	10,0-14,0	6,1-7,7
Ventura		44-61	26-35	8,2-11,4	4,9-7,5
Springhigh		66-76	44-56	10,8-11,9	6,7-7,0
Scintilla		45-58	31-38	9,0-13,0	6.0-8,3

Nota. Los datos de esta tabla están expresados en mg CO₂/Kg.h. Los datos de celdas rojas fueron extraídos de Wang et al. (2022), amarrilla de Varela et al. (2022) y celdas verdes datos extraídos y adaptados de Lare et al. (2023).

La tendencia general muestra que, conforme la temperatura desciende, la respiración de todas las variedades disminuye significativamente. A 5 °C y 0 °C, donde la actividad metabólica se reduce drásti-camente, Ventura y Snowchaser son las variedades con los valores más bajos. Esto sugiere que podrían ser más adecuadas para almacenamiento en frío prolongado.

Las diferencias observadas en los datos reportados por Wang et al. (2022), Lare et al. (2023) y Varela et al. (2022) también pueden deberse a múltiples factores, como ligeras diferencias en el grado de madurez del fruto al momento de la medición; tipo de maquinaria e intervalo o incluso las condiciones específicas de cada experimento (Brondino et al., 2022; Cai et al., 2021; Rivera et al., 2022).

El hecho de que la tasa de respiración disminuya con la temperatura tiene implicaciones prácticas importantes para la postcosecha del arándano. La reducción de la actividad metabólica a temperaturas más bajas contribuye a retardar la maduración, deterioro del fruto, menor pérdida de peso prolongando su vida útil y manteniendo su calidad por más tiempo sin comprometer los compuestos fenólicos, esto también impide que las perdidas postcosecha sean tan elevadas (Falagán et al., 2020; Smrke et al., 2021; Yan et al., 2020). En este sentido, la refrigeración se presenta como una estrategia clave para la conservación de los arándanos durante el almacenamiento y el transporte.

1.2. Humedad relativa

Otro elemento importante en la conservación de los arándanos es la humedad relativa (HR), esté puede comprometer en gran forma la firmeza y la pérdida de agua en la fruta. Si la concentración es la adecuada puede reducir la tasa de respiración y evitar el ablandamiento.

Se ha demostrado que el arándano prospera a una HR del 90% - 95%, que reduce la tasa respiratoria en aproximadamente un 30% en comparación con niveles de humedad más bajos (Anthony et al., 2024; Pratap et al., 2023; Ramos et al., 2024a); sin embargo, puede ser difícil mantener una HR alta porque puede favorecer el crecimiento de hongos como Alternaria spp. y Botrytis cinerea (Rhodes et al., 2024).

El envasado con control de humedad es una solución que se estudia para aumentar la vida en berries. Por ejemplo, un estudio de Zhang et al. (2020) demostró que usando películas de polietileno microperforadas en frutos de Vaccinium corymbosum L. preservan la HR dentro del envase y reduce la pérdida de agua en un 40%. Además, estas películas permiten un intercambio de gases suficiente, lo que ayuda a regular la tasa de respiración. El uso de recubrimientos a base de quitosano, que tiene cualidades antifúngicas y reguladoras de la HR, es otra nueva tecnología (Liu et al., 2021).

1.3. Dióxido de carbono

Las frutas y verduras, especialmente Vaccinium corymbosum L., se han conservado utilizando dióxido de carbono (CO₂₎ por su capacidad para ralentizar la respiración y retrasar la maduración. Según investigaciones recientes, concentraciones de CO₂ entre el 5% puede alargar la vida útil de los arándanos al disminuir su tasa respiratoria manteniendo peso y calidad nutricional en 62 días de almacenamiento; concentraciones superiores al 20% pueden causar daños en el fruto, incluyendo oscurecimiento de la piel y pérdida de firmeza (Smrke et al., 2021; Moggia & Lobos, 2023). En los cultivares Duke (Highbush) y Ochlockonee (ojo de conejo) concentraciones de CO₂ de 15% (15KPa) y 20% (20KPa) en conjunto con temperaturas de 1°C por tres días reducen la pudrición y mejoran la firmeza del fruto (Toledo et al., 2024). Esto implica que, dado que los tipos de arándanos varían según el genotipo en términos de comportamiento y resultados post-almacenamiento, las concentraciones de CO₂ deben modificarse para ellos.

Forney et al. (2022) afirman que los efectos a diferentes concentraciones de CO₂ pueden variar en función del cultivar. Por ejemplo, entre los cuatro cultivares estudiados (Duke, Aurora, Brigitta, Jersey y Liberty), se observó una disminución de la descomposición a 20KPa de CO₂ (20%), con un aumento de azúcares y ácidos a medida que aumentaba la concentración. Sin embargo, también existe una relación inversa, ya que cuanto mayor es la concentración de CO₂, menos firme es la fruta, y a medida que aumentan las concentraciones, también aumentan los volátiles fermentativos como el etanal, el acetaldehído y el acetato de etilo, lo que modifica el sabor de la fruta tras el almacenamiento. Se descubrió que Aurora tenía menos decoloración de la pulpa y que el cultivar Liberty producía menos sustancias químicas fermentativas volátiles (Forney et al., 2022).

2. Tecnologías

Según Chen et al. (2024), asegura que entre las tecnologías empleadas a nivel postcosecha en frutas y verduras están bajas temperaturas, envasado en atmosferas modificadas o Modified Atmosphere Packaging (MAP), plasma frio o Cold Plasma (CP), luz pulsada o Pulsed Light (PL), ultrasonido, luz ultravioleta, y ozono. En esta revisión se abordará netamente MAP, además se consideró agregar quitosano, radiación y ozono.

2.1. Envasado en Atmósferas Modificadas

Las técnicas de MAP consisten en modificar la composición gaseosa dentro de un envase para prolongar la vida útil y preservar la calidad de los alimentos frescos ralentizando las reacciones de deterioro (Czerwiński et al., 2021; Fang & Wakisaka et al., 2021; Pinto et al., 2020).

La reducción de la tasa de respiración provocada por MAP (Figura 4) se debe a la disminución de los niveles de oxígeno y aumento en la concentración de dióxido de carbono en atmosferas controladas, lo cual permite una rápida difusión de gases sostenido por bajos niveles de O₂en periodos prolongados (Anaya et al., 2020).

El mantenimiento de la firmeza de la fruta es causado por el bajo metabolismo respiratorio y al decremento en la actividad de enzimas pectolíticas (pectin metil esterasa y poligalacturonasa), causantes de deterioro de la pared celular (Yan et a., 2020; Liu et al., 2024). Al reducir este deterioro, la descomposición del fruto se ralentiza, atenuando el crecimiento micelar de hongos como Botrytis cinerea (Ramos et al., 2021).

Debido a la desaceleración de los procesos metabo-licos, en arándanos, como en la variedad ‘Duke’, estas atmósferas mantienen significa-tivamente los niveles de vitamina C (AS) respecto al grupo control. Asimismo, limitan la degradación de flavonoides, antocianinas y polifenoles al disminuir la exposición al oxígeno y estabilizar los pigmentos (Almasoud et al., 2024; Brizzolara et al., 2020; Kowalczy et al., 2025).

Los tratamientos MAP en arándanos han demos-trado ser efectivos para mantener la calidad microbiológica, nutricional y sensorial de estos frutos durante el almacenamiento en frío (Pinto et al., 2020; Kowalczyk et al., 2025). Algunos de los estudios han evaluado el efecto de diferentes condiciones de MAP, como la combinación de atmósfera controlada (AC) y MAP, en la conser-vación de los compuestos bioactivos y la actividad antioxidante de los arándanos (Kowalczyk et al., 2025).

Además, se han probado otras tecnologías comple-mentarias al MAP, como el uso de recubrimientos biodegradables, el tratamiento con ozono y la irradiación UV, para mejorar aún más la conservación de los arándanos (Jaramillo et al., 2021; Romero et al., 2022; Hu et al., 2021).

Una tecnología emergente en este ámbito es el uso de atmósferas controladas dinámicas (ACD), que ajustan automáticamente los niveles de CO₂ y O₂ en función de las necesidades del fruto. Un estudio demostró que el uso de ACD con niveles de 0,0 – 20,0 kPa CO₂ y 10,0 kPa O₂ reduce la tasa respiratoria y prolonga la vida útil de los arándanos (Forney et al., 2022). Además, esta tecnología es más sostenible que los métodos tradicionales, ya que reduce el desperdicio de fruta y el uso de productos químicos.

2.2. Quitosano

El quitosano, un biopolímero versátil, se obtiene mediante la N-desacetilación parcial de la quitina, la principal fuente de obtención son los exoesqueletos de crustáceos, pero también se encuentra en insectos y hongos (Liao et al., 2022; Pellis et al., 2022). Su proceso de obtención implica etapas de desmine-ralización, desproteinización y desacetilación, resul-tando en un polímero cuyas propiedades funcionales varían según su grado de desacetilación y la fuente (Rasweefali et al., 2022; Hahn et al., 2020; Izadi et al., 2025).

Propiedades del quitosano a nivel postcosecha en frutas y verduras:

1. Antimicrobiano: Los grupos amino protonados interactúan con las membranas celulares micro-bianas, disrumpiendo su integridad (Yan et al., 2021; Wang et al., 2020). Del mismo modo esta propiedad se puede potenciar cuando simultáneamente se combina con aceites esenciales, añadiendo más efectos en el tratamiento.

2. Barrera física: Debido a la formación de recubrimientos semipermeables elástica y resisten en la fruta puede formar una atmósfera interna que controla de mejor forma intercambio gaseoso y la pérdida de agua del epicarpio, siendo una barrera extra que se le da a la fruta a parte del blooming (Dai et al., 2025; Munira et al., 2024; Sun et al., 2025).

3. Mejora de la capacidad antioxidante e inducción de defensas: Su acción en suma con otras formas de conservación mejora la capacidad antioxidante de frutos de arándano, del mismo modo estimula los mecanismos de defensa en los tejidos vegetales, mejorando su respuesta ante patógenos y comportándose de forma superior al estrés oxidativo en el almacenamiento (Dai et al., 2025; Tan et al., 2025; Torres et al., 2025).

4. Biodegradabilidad Su capacidad de degradarse con el tiempo y de formar una película imperceptible la convierten en una gran opción para aumentar la vida útil de los frutos (Sun et al., 2025; Yang et al., 2025).

5. Hidratante: Debido a la formación de barrera, permite una mejor retención de humedad en la fruta, evitando la degradación de la calidad por la afinidad que posee con el agua por sus grupos hidroxilos y aminoácidos (Chaiwong et al., 2020; Wang et al., 2024).

Los recubrimientos basados en quitosano han emergido como una solución altamente efectiva para retrasar la descomposición, pérdida de peso del fruto, reducir el crecimiento de hongos y mohos; también manteniendo la firmeza (Figura 5), el contenido fenólico total (TPC), capacidad antioxidante (AC), solidos solubles totales (TSS), acidez titulable (TA), acido ascórbico o vitamina C (AsA), pectina soluble en agua (WSP) y pectina soluble en soluciones salinas (ISP). Algunas asociaciones de recubrimientos actúan disminuyendo la actividad de enzimas favorecen a la descomposición de la fruta como la polifenol-oxidasa (PPO) y peroxidasa (POD) (Tabla 2) (Ramos-Bell et al., 2022a; Ramos-Bell et al., 2022b; Xu et al., 2023; Xing et al., 2021; Sun et al., 2022; Lee et al., 2024; Eldib et al., 2020; Sun et al., 2025).

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Figura 5. Efectos del recubrimiento de quitosano en frutos de Vacinium corymbosum. Nota. TR = Tasa de Respiración; AS = Ácido ascórbico.

Los recubrimientos postcosecha actúan al disminuir la difusión de oxígeno e impidiendo la salida de dióxido de carbono, se genera una atmósfera modificada de forma pasiva (bajos niveles de O₂ y altos de CO₂) en el interior del fruto (Sharma et al., 2024; Dai et al., 2025). Esta tecnología ralentiza la actividad metabólica, manteniendo la firmeza durante decenas de días y preservan el contenido de sólidos solubles, siendo un indicativo de un menor consumo respiratorio por consecuente mayor vida útil del producto, pero la tasa de respiración afecta de forma indirecta (no cuantificada en los estudios) por la ralentización de la actividad enzimática (Xing et al., 2021; Sun et al., 2022; Lee et al., 2024). De manera complementaria, muchos recubrimientos incorporan compuestos bioactivos de aceites esenciales o aditivos como eugenol, β-cariofileno y ácido salicílico que interfieren directamente con las enzimas del metabolismo respiratorio (citocromo oxidasa y complejos de la cadena de transporte electrónico) y modulan la actividad de enzimas antioxidantes como la peroxidasa (POD) y la polifenoloxidasa (PPO) (Almasoud et al., 2024; Chen et al., 2022; Xing et al., 2021; Sun et al., 2025).

Tabla 2

Efecto de tratamientos de quitosano asociado a tecnologías postcosecha en Vaccinium spp.

Tratamiento	Composición	Condiciones	Efecto	Referencia
Quitosano + Ácido salicílico (AS) (in vitro)	0,5-1,5% quitosano (90% desacetilación) + 2-5 mM ácido salicílico	25 °C, 90-95% HR por 10 días	↓ Inhibición de 93% el crecimiento micelial. ↓ 90% de la esporulación.	Ramos-Bell et al., 2022a
Quitosano + Ácido salicílico (in vivo)	1,5% quitosano + 5 mM ácido salicílico	Inmersión 2 min, 25°C, 90-95% HR por 10 días	↓ 60% en la incidencia de B. cinerea.	Ramos-Bell et al., 2022b
CEO (aceite esencial de clavo) /CS-NCs 2 (nanocápsulas de quitosano)	CS/CEO= 1:0,75, con encapsulación del 39% cargadas con eugenol (≥ 87,2%) y β-cariofileno (≥ 9,3%), Tween 80 y TPP trifosfato de sodio (0,15% w/v),	Bolsa no tejida con 0,5 g de CEO/CS-NCs, 4 °C, HR elevada, 15 d, No inmersión, IP-MAP	↓ Tasa de descomposición del 6,73% y 18,08%. ↑ Vida útil en 12d. ↓ Pérdida de peso del 9.36% en 15d. ↔ Firmeza de 158,06 g en 12 d. ↔ Pérdida AsA en 15,5%. ↔ TPC y AC ↔POD/PPO	Xu et al., 2023
Quitosano + nano TiO₂ (CTS-TiO₂)	1 g quitosano + 1 g Nanopartículas de TiO₂ + 2 g glicerina+ ácido acético glacial 0,6%	Inmersión 2 min, bolsa de polietileno (0,045 mm) con 6 orificios, 0 °C, 32d, HR alta y preenfriamiento 24 h a 4 °C antes del tratamiento	↔ Firmeza, 12% de pérdida ↔ TSS y TA. ↔ AsA de 13.45 mg/100 g. ↔ TPC y AC. ↑ POD. ↓ PPO y MDA. ↓ Bacterias mesófilas hasta 25X.	Xing et al.2021
Quitosano+ aceite esencial de tomillo+ UV-C	9 g Quitosano +Ácido acético al 1% (v/v) + 10 g Gelatina+ Glicerol (30% p/p) + 11 mL Aceite esencial de tomillo + 11 mL Tween 80 + UV-C: 3 kJ/m² (irradiación bilateral)	Inmersión 30 s, irradiación UV-C por lado (total 308 s) a 60cm, 4 ± 0,5 °C, 56 d, HR alta,	↔ Firmeza. ↓Actividad y expresión génica de enzimas degradantes. ↓Ablandamiento y senescencia. ↔ Degradación estructural WSP/ISP. ↑ Vida útil 56d.	Sun et al., 2022
ChNF/LCNF/SA/TTO	Chitosan nanofibras (ChNFs): 1 wt %+Lignocelulosa nanofibras (LCNFs) 0,5 wt % + Sodium alginate (SA) 0,5 wt % + Aceite de árbol de Té (TTO): 0,1 % w/v + Tween 80 en 0,3 % w/v	Dispersión de nanofibras en SA a 50 °C (1 h), enfriar a 25 °C, Añadir TTO y Tween 80, homogeneizar 20 min con Ultra-Turrax, Rociar 5 mL/fruta, secar 1 h, Almacenar a 4 °C, 30% HR, hasta 15 d	↓ Pérdida de peso 9,2% 10 d. ↑ 16,2% SSC a 15 d. ↔ Firmeza ~1,34 N. ↑ Barrera de gases (ángulo de contacto >57,5°). ↓ Degradación de azúcares y ácidos.	Lee et al., 2024
CHN-N-Nano	Quitosano al 1% (grado 85% deacetilación) + SiO₂ nanopartículas: 1% (15 nm) + Nisin: 1 % (en HCl 0,02 M) + Glicerol: 0,5% (plastificante) + Ácido acético: 1% (solvente)	Inmersión 2min/fruta, secar + 28 ± 0,5 °C, 75% HR, hasta 8 d,	↓ Encogimiento 38,5% y tasa de podredumbre del 8,61% a 8 días. ↓ Poblaciones de mohos/levaduras y mesófilos. ↔ Dureza, masticabilidad, cohesividad y color. - Inhibición de PPO y POD. ↔ Vitamina C y antocianas.	Eldib et al., 2020
CSFG (CSF + Gox)	Carboximetil quitosano (CMCS) 1,5 wt %+ Alginato de sodio (SA) 1,5 wt % + Glicerol 0,5 wt % + CaCl₂ 2 wt % (reticulante) + Glucosa oxidasa (Gox)150 U/L	Aplicar sobre heridas de fruto; incubar a 25 °C, HR 90%, evaluar hasta 6 d,	↓ B. cinerea en 66,7% a 6 días. ↑ firmeza 5,85 N. ↓Tasa de podredumbre al 33,3% a 6 días. ↓ Germinación de esporas solo 17,5%. - ↓ MDA en 40,4% en heridas a 2 días. - ↓ TSS. ↑aumentados 65,3% a 2 días.	Sun et al., 2025

Nota. Los valores de concentración se expresan en milimoles (mM); la temperatura en grados Celsius (°C); la humedad relativa en porcentaje (HR); y los tiempos en días (d) o minutos (min). IP-MAP = atmósfera modificada en empaques individuales. AsA = ácido ascórbico; TPC = compuestos fenólicos totales; AC = actividad antioxidante; POD = peroxidasa; PPO = polifenol oxidasa; MDA = malondialdehído; TSS = sólidos solubles totales; TA = acidez titulable; g = gramos. “↑” indica incremento, “↓” disminución y “↔” ausencia de cambio significativo en el parámetro evaluado.

Mantener las reservas metabólicas de la fruta resulta esencial para prolongar su vida útil. Los recubri-mientos limitan el uso de azúcares como combustible respiratorio y preservan antioxi-dantes naturales como la vitamina C y las antocianinas garantizando una mayor disponi-bilidad de sustratos para procesos celulares esenciales (Almutairi et al., 2024; Khodaei et al., 2021).

En pruebas in vivo, los frutos de arándano fueron sumergidos en soluciones de quitosano (1,5%) y ácido salicílico (5 mM) durante 2 minutos, permitiendo su secado a temperatura ambiente antes de su almacenamiento a 25 °C y 90% - 95% de humedad relativa por 10 días. Para evaluar la incidencia del hongo, los frutos fueron inoculados con 5 µL de una suspensión de B. cinerea ajustada a 10⁵ esporas/mL y posteriormente se monitoreó la tasa de descom-posición. Los resultados indicaron que la combinación de ambos compuestos redujo la incidencia de la enfermedad en un 60% en comparación con el control sin tratamiento (Ramos-Bell et al., 2022b). Estos hallazgos respaldan el potencial del quitosano y el ácido salicílico como agentes naturales para mejorar la conservación de arándanos, minimizando el impacto ambiental y cumpliendo con normativas de inocuidad alimentaria (Ramos et al., 2022a).

El quitosano y el ácido salicílico han demostrado ser una alternativa eficaz y ecológica para el control de Botrytis cinerea, un fitopatógeno agresivo responsable de pérdidas postcosecha en arándanos, especialmente debido a su resistencia a fungicidas sintéticos (Ramos-Bell et al., 2022a, 2022b). En ensayos in vitro, se utilizaron concentraciones de quitosano al 0,5%, 1,0% y 1,5% (p/v) con un grado de desacetilación del 90%, y ácido salicílico en concentraciones de 2, 3 y 5 mM, evaluando su efecto sobre el crecimiento micelial de Botrytis cinerea en agar papa dextrosa durante un período de 10 días a 25 °C (Ramos et al., 2022a). La evaluación in vivo determino que el quitosano al 1,5% y el ácido salicílico a 5mM inhibieron hasta en un 93% el crecimiento micelial del hongo y 90% de la esporulación respectivamente (Tabla 2) (Ramos et al., 2022a). Se observó que el quitosano altera la pared celular del patógeno mediante interacciones electros-táticas, mientras que el ácido salicílico promueve la producción de compuestos antimicrobianos que afectan su desarrollo (Ramos et al., 2022b). Micro-grafías electrónicas revelaron daños estructurales severos en el hongo, con deformaciones y colapso de las hifas, confirmando la acción antifúngica de los tratamientos (Ramos et al., 2022a).

Debido a sus mecanismos de acción del quitosano es una excelente alternativa para el control de enfermedades a nivel postcosecha como Alternaria spp, antracnosis Colletotrichum acutatum y moho gris Botrytis cinerea, no solo para arándano o bayas, sino que su eficacia También fue probada en fresa, mango, tomate y aguacate (Valenzuela et al., 2022).

Cuando se estima la reducción de la tasa respiratoria global, los tratamientos (Tabla 2) basados en quito-sano más UV-C y aceite esencial alcanzan una disminución del 70% - 80% y extienden la vida útil hasta 56 días; los nanosistemas de aceites esenciales alcanzan un 50% - 65% de reducción y 12 - 15 días de conservación; mientras que combinaciones más sencillas (quitosano + ácido salicílico) logran un 40% - 55% de recorte y sistemas de corta duración apenas un 30% - 45%. Estas cifras se alinean con correla-ciones claras: a mayor reducción metabólica, mayor vida útil; la conservación de la firmeza indica menos actividad enzimática degradativa; y la preservación o aumento del SSC denota un menor consumo de sustratos respiratorios.

2.3. Radiación

La radiación es una forma de energía que se propaga en ondas electromagnéticas o partículas subatómicas, existiendo radiaciones ionizantes y no ionizante. En el ámbito postcosecha de frutas y verduras, se emplea como una tecnología no térmica para mejorar la seguridad alimentaria y prolongar la vida útil de los productos frescos (Gąstoł & Błaszczyk, 2024; González-Villagra et al., 2020). Radiaciones no ioni-zantes (ultravioletas) son la parte del espectro electromagnético de 10 a 400 nm de longitudes de onda, entre la luz visible y los rayos X (Bilgin & Güneş, 2024). De acuerdo a la longitud de onda esta puede ser de tipo UV-A (315 - 400 nm), UV-B (280 - 315 nm), UV-C (200 - 280 nm) y UV-V (10 - 200 nm) (Jaramillo et al., 2021).

Las radiaciones ionizantes (rayos gamma [γ], rayos X y haces de electrones [e-beam]) causan excitación e ionización en la sustancia absorbida; a nivel postcosecha en frutas y verduras comúnmente usan radiaciones ionizantes del tipo rayos gamma de fuentes de cobalto-60 y rayos de máquinas de rayos X de hasta 5 MeV, por otro lado, los haces de electrones de aceleradores de electrones llegan hasta 10 MeV se consideran radiológicamente seguros (Jaramillo et al., 2021; Pi et al., 2021).

La radiación no ionizante del tipo UV-C (254nm) es la más empleada en postcosecha en arándanos para con-trolar inhibir la pérdida de peso, aumentar la firmeza de la fruta, retrasar el ablandamiento, aumentar los compuestos fenólicos y la actividad antioxidante, reducir la tasa respiratoria, aumentar las enzimas superóxido dismutasa (SOD), peroxidasa POD, fenilalanina amonio liasa (PAL) y polifenoloxidasa (PPO) (Bilgin & Güneş, 2024; González-Villagra et al., 2020; Liu et al., 2025; Ramos et al., 2021). Se compara radiaciones ionizantes (γ, X, e-beam) y no ionizantes (UVB, UV-C) en la calidad postcosecha del arándano (Figura 6). Las ionizantes retrasan el ablandamiento al inhibir enzimas de pared celular (PME y PG) y reducir la degradación de polisacáridos; también pueden reducir la acción del etileno y ralentizan la maduración y senescencia. Los tipos de radiación no ionizante como la UV-C actúa como sanitizante al dañar DNA/RNA microbiano y generar ROS (especies reactivas al oxigeno). UV-C y UVB inducen hormesis, activando genes de defensa y reduciendo mohos (>99% con UV-C), esto incrementa los fenoles, antocianinas y la capacidad antioxidante (SOD, CAT, APX) que mantienen la homeostasis de ROS y protegen vitamina C (Baia, et al., 2020; Chen et al., 2024; Darré et al., 2022, Ji et al., 2020). En general, la calidad final de la fruta depende de la dosis y de la respuesta fisiológica de la variedad, que pueden generar efectos no deseados en la fruta como alteraciones en el sabor y aceleración de pérdida de peso (Liu et al., 2020; Pi et al., 2021; Jaramillo et al., 2021; Gastol et al., 2024).

Tabla 3

Efecto de tratamientos postcosecha con radiación en Vaccinium spp.

Tratamiento	Dosis	Longitud de onda	Variedad	Resultados principales	Referencia
UV-C	2.4 kJ m⁻², 10 min	254 nm	O'Neal	↓Flora fúngica. - Ligero aumento del pH. ↑ 13% fenoles totales. ↑ 8% capacidad antioxidante.	Frisón et al. (2021)
UV-C	4 kJ m⁻²	254 nm	Berkeley	- Inhibición de respiración. ↓MDA. ↑Acumulación de antocianinas.	Li et al. (2024)
UV-C continuo	11.4 kJ/m² (15 min)	254 nm	O’Neal	↓ Retraso de 6 d en podredumbre nativa y 4 d en B. cinérea. ↑ Firmeza. ↓ Pérdida de peso a 15 d	(Jaramillo et al., 2021)
UV-LED estático	16.17 mJ/cm² (300 s)	275 nm	No especificada	↓Reducción de 0.95 log CFU de E. coli; max. ↔ Sin daño al fruto a 39.5 °C. ↑ Cobertura mejorada frente a sombras.	Haley et al., 2023
UV-B LED	10 min (11.5 kJ/m²)	310 nm	Cargo	↑ Antocianinas (+60%) y ↑ fenoles totales (+15%). ↓ Pérdida de peso (<3% a 24 h) ↑ Color más uniforme desde zona peduncular. ↔ Sin daño visible.	Varaldo et al., 2024
UV-B + UV-C	UV-B 11.5 kJ/m² por 10 min. UV-C 8.15 mW/m² por 10 min.	310 y 278 nm	Cargo	↑ Fenoles, antocianinas y buena pigmentación superficial. ↓ pérdida de peso, especialmente al irradiar desde zona peduncular.	Varaldo et al., 2024
UV-C LED	1.6 kJ/m², pulso único	278 nm	Legacy Brigitta O’Neal	↑ Actividad antioxidante. ↓ Pérdida de firmeza. ↓ Decaimiento sin afectar color ni sólidos solubles. - Potencial uso combinado con frío	González-Villagra et al., 2020
e-beam	600-800 Gy	No aplica 10 MeV	No especificada	↓ pérdida de peso, ↔ sólidos solubles o color. ↔ Sin daño por frio en 21d.	Vargas & Brison, 2023
Rayos X	400–800 Gy (hasta 7 MeV)	Rayos X (5–7 MeV)	No especificado	- Irradiación con 7 MeV mejor distribución (DUR). ↔ No alteró color, sólidos ni pérdida de peso. - Seguro hasta en envases densos.	Vargas & Brison, 2023
Radiación gamma (⁶⁰Co)	0.72 kGy a 4 °C	Gamma	Bluecrop	↑ Firmeza por mayor señalización de Ca²⁺. ↓ Actividad de PG y PME. ↓ Senescencia. ↑ Mejor efecto en frío. ↔ No afectó negativamente el color ni los compuestos volátiles en bajas dosis (<1 kGy).	Wang et al., 2024
Radiación gamma (⁶⁰Co)	2.5 kGy por 72 min	Gamma	Bluecrop	↑ concentración de Ca²⁺ intracelular (máx. 778 nM a 10 h). - Redistribución subcelular: ↑ Ca en pared celular 60 %, ↓ en organelas y citoplasma. ↑ Firmeza del fruto (1.36 N a 30 d). ↓ Retarda reblandecimiento bajo refrigeración.	Wang et al., 2023
Radiación gamma (⁶⁰Co)	0.72 kGy por 12 min	Gamma	Brightwell	↑ Preservación a 25°C. ↓ Podredumbre post-7 d. ↑VOC “frutales ↓ Aldehídos “verdes” → firmeza durante 15 d (↑Señaización y redistribución Ca²⁺/↓PG, PME). → PPO a 4°C.	Liu et al., 2024

Nota. Las dosis de irradiación aparecen en unidades de energía por área: kJ m⁻² o mJ cm⁻². Cuando se emplea radiación ionizante, las dosis se expresan en kGy o Gy; MeV = megaelectronvoltio (energía del haz). La longitud de onda está en nanómetros (nm); el tiempo en segundos (s); la firmeza en newtons (N); y los períodos de evaluación en días (d) a °C. VOC = compuestos orgánicos volátiles; MDA = malondialdehído; PG = poligalacturonasa; PME = pectina metilesterasa; PPO = polifenol oxidasa; CFU = unidades formadoras de colonias (carga microbiana). “↑” indica incremento, “↓” disminución y “↔” ausencia de cambio significativo.

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Tipo de tratamiento	Dosis / Composición	Condiciones (T°, HR, tiempo, duración)	Variedad	Efecto principal sobre la fruta	Referencia (autor, año)
Gaseoso (fumigación)	200 mg/m³ ozono, 60 min	4 °C, 80 días almacenamiento	No especificada	↓ Penicillium, ↑ firmeza, ↓ pérdida de sólidos solubles, fenoles y antocianos	Wu et al., 2022
Gaseoso (periódico)	15 ppm ozono, 30 min cada 12 h	4 °C, 28 días almacenamiento	‘Bluecrop’	↑ SOD, POX, PAL, ↓ ROS; 0% moho a 28 d (vs 27,5% testigo)	Piechowiak et al., 2020
Gaseoso	0,01 mL/L (~10 ppm) ozono, 30 min	4 °C, 14 días almacenamiento	‘Duke’	↑ fenoles (+16% – 34%), antocianinas y azúcares (+6%)	Sánchez et al., 2022
Acuoso (lavado)	5,1 mg/L ozono, 10 min	4 °C, 15 días almacenamiento	‘Duke’	Alteraciones en cera epicuticular, sin afectar color; ligera reducción microbiana	Sánchez et al., 2022
Gaseoso + MAP (combinado)	6 ppm ozono, 16 h (pretratamiento)	1 °C pretratamiento, luego MAP (10 kPa O₂, 40 kPa CO₂), 15 d a 4 °C	‘Bluecrop’	↓ mohos y levaduras, conservación de antocianinas sin afectar parámetros de calidad	Pinto et al., 2020
Gaseoso (varios tiempos)	0,7–4,3 ppm ozono (según tiempo)	10 °C, 90 % HR, 20–30 días almacenamiento	No especificada	1,4 ppm por 20 min: ↓ pudriciones (24% infectado vs 80% en control a 30 días)	Lemic et al., 2025