Regeneración in vitro de arnaucho (Capsicum chinense Jacq.) a partir de yemas apicales
DOI:
https://doi.org/10.17268/manglar.2021.009Resumen
El ají supano o arnaucho (Capsicum chinense Jacq.), es un ecotipo originario del valle de Supe, provincia de Barranca, de gran importancia en la cultura culinaria del norte chico de la región Lima. En la actualidad su área de cultivo se encuentra reducida, siendo su única área de conservación in situ, por lo que es necesario su conservación en condiciones ex situ, como bancos de semillas o in vitro. La alternativa de conservación en condiciones in vitro permitirá obtener plántulas libres de patógenos, su multiplicación masiva en cualquier época del año y conservación para programas de mejoramiento genéticos. Con este contexto, se planteó el objetivo de obtener plántulas completas mediante la regeneración in vitro de arnaucho a partir de yemas apicales. Se establecieron in vitro semillas de arnaucho desinfectando con alcohol (70%) y NaClO (1.5 %) y cultivados en medio MS. Para la regeneración se presentaron tratamientos con diferentes concentraciones de sales MS y ácido giberélico. Se regeneraron plántulas completas en todos los tratamientos, así como la formación de raíces. Se obtuvieron plántulas de mayor altura (9,11 cm), número de nudos (5,89) y número de hojas (8,35) con la adición de 0,5 mg/L de ácido giberélico al medio de cultivo.
Citas
Aliaga, J. 2019. Caracterización y sostenibilidad del ají supano (Capsicum chinense jacq.) En la cuenca baja del río supe, Lima. Tesis de doctorado, Universidad Nacional Agraria La Molina, Lima, Perú.
Aliaga, J., Portalatino, E., Obregón, K., Rodríguez, A., & Jiménez, J. 2020. Presencia del “ají nativo supano” (Capsicum chinense Jacq.) en el valle de Supe, Perú. Peruvian Agricultural Research, 1(2), 58-63.
Aliaga, J., & Vega, E. 2018. Variabilidad intragenotípica de Capsicum chinense Jacq. “ají Supano” provenientes de la cuenca baja del río Supe-Barranca. Aporte Santiaguino, 11(2), 251-262.
Aliaga, J., Vega, E., Jiménez, J., & Rodríguez, A. 2018. Nivel de ploidía del ají Supano (Capsicum chinense Jacq.) provenientes de la cuenca baja del río Supe. Infinitum, 8(2), 121-125.
Andrade, D., Córdoba, M., Criollo, H., & Lagos, T. 2013. Evaluación de medios de cultivo para propagación in vitro de semillas y explantes de especies silvestres de Solanum. Acta Agronómica, 62(1), 27-36.
Araque, E., Bohórquez, M., Pacheco, J., Correa, L., Urquijo, J., Castañeda, S., & Pacheco, J. 2018.Propagación y tuberización in vitro de dos variedades de papa. Ciencia en Desarrollo, 9(1), 21-31.
Argüelles, A., Hernández, A., Cortez, A., & Díaz, H. 2020. Callogénesis in vitro de paprika (Capsicum annuum L.) cv. Papri King a partir de tallos. Big bang faustiniano, 9(1), 4-7.
Bonilla, M. 2015. Conservación in vitro: una perspectiva para el manejo de los recursos fitogenéticos. Revista De Investigación Agraria Y Ambiental, 6(1), 67-82.
Botero-Giraldo, C., Restrepo-Osorio, C., & Urrea-Trujillo, A. 2011. Respuesta de tres genotipos de tomate al cultivo in vitro y asilamiento de protoplastos. Actualidades Biológicas, 33(94), 35-49.
Criollo, H., Insuasti, K., & Delgado, W. 2016. Regeneración in vitro de plántulas de tomate de árbol [Solanum betaceum (Cav.) Sendt.]. Revista Colombiana de Ciencias Hortícolas, 10(2), 252-261.
Díaz, H., Honorio, Z., Hernández, A., Durand, M., Gózalo, A., & Domínguez, G. 2020. Identificación de especies frutícolas nativas con potencialidad productiva en peligro de extinción en la provincia de Huaura. Aporte Santiaguino, 13(2), 78-91.
Gutiérrez, A., Santacruz, F., Cabrera, J., & Rodríguez, B. 2003. Mejoramiento genético vegetal in vitro. E-Gnosis, 1(4), 1-19.
Gutierrez-Rosati, A., & Vega, B. 2016. Micropropagacion in vitro de “ají mirasol”, Capsicum Baccatum var. Pendulum. The Biologist, 15(1), 171-181.
Hernández, A., Argüelles, A., Cortez, A., & Díaz, H. 2020. Efecto de la concentración de 2,4-diclorofenoxiacético en la inducción de callos in vitro utilizando cotiledones de rocoto (Capsicum pubescens Ruiz & Pav.). The Biologist, 17(2), 327-334.
Hernández, A., Pineda, A., & Díaz, H. 2019. Efecto de la luz y del ácido giberélico en la germinación in vitro de Capsicum annuum L. cv. ‘Papri King’. Biotecnología Vegetal, 19(3), 165-170.
Ibiza, V., Joaquín, J., & Nuez, F. 2012. Taxonomy and genetic diversity of domesticated Capsicum species in the Andean region. Genetic Resources and Crop Evolution, 59(6), 1077-1088.
Izquierdo, H., Alcaraz, L., & Rodríguez-Álvarez, M. 2017. Micropropagación de chiltepín (Capsicum annuum L. cv. ‘glabriusculum’) mediante el empleo de una oligosacarina de origen péctico. Acta Universitaria, 27(5), 34-43.
López, S.; López, A., Gil, A.; Mostacero, J.; De La Cruz, A.; & Villena, L. 2020. Morfometría de frutos y semillas del “ají mochero” Capsicum chinense Jacq. Ciencia y Tecnología Agropecuaria, 21(3), e1598.
López-Medina, E., Mostacero-León, J., Gil-Rivero, A., López-Zavaleta, A. & De La Cruz-Castillo, A. 2019. Efecto del ácido giberélico y del ácido indolacético en la micropropagación in vitro de Solanum tuberosum var. Maria Reiche. Rebiol, 39(1), 1-9.
López-Medina, E., Mostacero-León, J., Gil-Rivero, A., López-Zavaleta, A., De La Cruz-Castillo, A., & Villena, L. 2020. Efecto sinérgico del Ácido giberélico y del Ácido indolacético en la propagación in vitro de Solanum tuberosum L. ‘‘papa nativa de pulpa de color”. Rebiol, 39(2), 49-57.
Meckelmann, S., Riegel, D., van Zonneveld, M., Ríos, L., Peña, K., Ugas, R., Quinonez, L., Mueller-Seitz, E., & Petz, M. 2013. Compositional Characterization of Native Peruvian Chili Peppers (Capsicum spp.). Journal of Agricultural and Food Chemistry, 61(10), 2530–2537.
Murashige, T., & Skoog, F. 1962. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue culture. Physiology Plant., 15, 473-497.
Ochoa-Alejo, N., & Ramírez-Malagón, R. 2001. In vitro chilli pepper Biotechnology. In Vitro Cellular & Developmental Biology Plant, 37(6), 701-729.
Ortega-Martínez, L., Ocampo, J., Martínez, C., Pérez, A., & Sánchez, J. 2013. Efecto de las giberelinas sobre el crecimiento y calidad de plántulas de tomate. Revista de Ciencias Biológicas y de la Salud, 15(3), 56-60.
Rai, R.; Diengdoh, L., Srivastava, A., & Bag, T. 2012. Efficiency of different nodal segments for potato micropropagation. Environment and Ecology, 30(3), 594-597.
Rodríguez, W., Celis, A., Carvalho, R., Ferreira, R., & Peron, A. 2015. Caracterização cariotípica de acessos de Capsicum sp. Acta Scientiarum Agronomy, 37(2),147-153.
Srivastava, A., Diengdoh, L., Rai, R., Bag, T., & Singh, B. 2012. In vitro micropropagation and micro-tuberization potential of selected potato varieties. Indian Journal of Hill Farming, 25(2), 14-17.
Publicado
Cómo citar
Número
Sección
Licencia
Derechos de autor 2022 Angel David Hernández Amasifuen, Alexandra Jherina Pineda Lázaro, Julio Alcides Rojas Chávez, Hermila Belba Díaz Pillasca
Esta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución 4.0.
Manglar is an open access journal distributed under the terms and conditions of Creative Commons Attribution 4.0 International license
